Publisert: 2023 | Sist oppdatert: mai 2026
Omfattende guide til frysing av celler: Sikre levedyktighet og sterilitet
Frysing av celler er en kritisk prosess i cellekulturhåndtering, som sikrer langvarig lagring og bevaring av verdifulle cellelinjer. Uansett om man arbeider med menneskelige eller dyreceller, er det avgjørende å følge nøyaktige protokoller og opprettholde strenge aseptiske teknikker for å oppnå vellykket kryokonservering.
Denne veiledningen gir detaljerte instruksjoner om nødvendige materialer, reagenser og trinnvise prosedyrer for å fryse celler effektivt samtidig som levedyktigheten og steriliteten bevares. Ved å følge disse retningslinjene kan forskere trygt lagre og senere gjenopplive cellekulturer med minimalt tap av cellelevedyktighet, og dermed opprettholde integriteten og påliteligheten til eksperimentresultatene.
For å begynne med er det viktig å etablere et sterilt arbeidsmiljø. Riktige aseptiske teknikker spiller en avgjørende rolle for å forhindre kontaminering og sikre kulturens sterilitet.
Aseptisk teknikk
Følg aseptiske teknikker gjennom hele prosessen for å sikre at kulturene forblir sterile.
Omfattende prosess for frysing av celler
Dette flytskjemaet gir en detaljert visuell veiledning til de viktigste trinnene i riktig frysing av celler. Følg disse prosedyrene for å sikre høy cellelevbarhet og integritet under kryokonserveringsprosessen.
Klargjøring av frysemedium
Forbered kryobeskyttende frysemedium i henhold til celletypen:
- FBS-holdige kulturmedier: 90 % FBS + 10 % DMSO eller 70 % vekstmedium, 20 % FBS og 10 % DMSO
- Celler som krever glyserol: 90 % FBS + 10 % glyserol
Vurder å anskaffe vårt ferdigblandede frysemedium:
- Frysemedium CM-1: For protokoller som krever et medium som inneholder føtalt bovint serum (FBS)
- Frysemedium CM-ACF – serumfritt: For et FBS-fritt alternativ
Merking og dokumentasjon
Merk kryorørene med følgende opplysninger:
- Dato
- Forskerens navn
- Celle nummer
- Passasjenummer
- Celletype
- Eventuell tilleggsinformasjon (f.eks. genetiske modifikasjoner)
Cellepreparat
For vedheftende celler:
- Overvåk cellene til de når 85–95 % konfluens
- Sug ut det gamle dyrkningsmediet
- Skyll cellemonolaget med kalsium- og magnesiumfritt PBS
- Løsne cellene med Accutase, trypsin eller trypsin-EDTA og nøytraliser med dyrkningsmedium om nødvendig
- Overfør cellesuspensjonen til et 50 ml Falcon-rør
For suspensjonsceller:
- Kontroller celletetthet og helse under et mikroskop
- Overfør cellesuspensjonen direkte til et 50 ml Falcon-rør
Celltelling og sentrifugering
- Tell cellene ved hjelp av et hemocytometer eller en automatisk celleteller
- Sentrifuger ved 300 g i 3–5 minutter ved romtemperatur for å pelletere cellene
- Sug forsiktig av supernatanten, uten å forstyrre cellepelleten
- Varm det tilberedte frysemediet til 37 °C før bruk
Kryokonservering
- Resuspender cellepelleten i frysemediet til en tetthet på 2,0 millioner celler/ml for vedheftende celler og 5 millioner celler/ml for suspensjonsceller, eller ønsket konsentrasjon
- Fordel 1,0 ml (eller mer etter behov) av cellesuspensjonen i merkede kryorør
- Bruk en langsom frysemetode før cellene overføres til langtidslagring
- ? Metode
- ? Trinn
-
❄️
Manuell frysing -
1️⃣ Plasser cellene i frysemedium i en fryser ved 4 °C i 40 minutter.
2️⃣ Overfør til en fryser ved -80 °C i 24 timer.
3️⃣ Oppbevar cellene i flytende nitrogen for langvarig lagring. -
?
Bruk av Mr. Frosty -
1️⃣ Forbered cellene i kryorør med frysemedium.
2️⃣ Plasser kryorørene i Mr. Frosty-beholderen.
3️⃣ Oppbevar ved -80 °C i 24 timer før overføring til flytende nitrogen. -
?
Fryser med kontrollert hastighet -
1️⃣ Programmer enheten til å senke temperaturen gradvis.
2️⃣ Plasser de forberedte cellene i fryseren.
3️⃣ Etter frysesyklusen overfører du cellene til flytende nitrogen.
- Oppbevar kryorørene ved temperaturer under -130 °C eller i flytende nitrogen for langvarig oppbevaring.
Materialer og reagenser
- 1–2 ml kryorør
- CoolCell®-fryseenhet eller fryser med kontrollert hastighet
- Kryobeskyttende frysemedium (f.eks. DIY-kryobeskyttelsesmedier, CM-1, CM-ACF eller spesialiserte medier)
- Fosterkalveserum (FBS) eller kondisjonert medium
- DMSO eller glyserol
- Kalsium- og magnesiumfritt PBS
- Accutase, trypsin eller trypsin-EDTA (for vedheftende celler)
- 15 ml eller 50 ml Falcon-rør
- Hemocytometer eller automatisk celleteller
- Sentrifuge