A9-Zellen
























Allgemeine Informationen
Beschreibung | A9-Zellen sind eine fibroblastenähnliche Zelllinie, die aus dem Fettgewebe der Maus gewonnen wird. Sie wurden 1940 von W. R. Earle als Subklon des Elternstamms L929 etabliert. Der Elternstamm wurde aus normalem subkutanem areolären und adipösem Gewebe einer männlichen C3H/An-Maus gewonnen. Ein bemerkenswertes Merkmal dieser Zellen ist, dass sie Adenosin-Phosphoribosyl-Transferase (APRT) und Hypoxanthin-Phosphoribosyl-Transferase (HPRT) exprimieren, die als APRT+ und HPRT+ bezeichnet werden. Diese Zellen haben sich bei der Untersuchung von Viren bewährt, insbesondere des Pseudorabies-Virus (PRV), des vesikulären Stomatitis-Virus (VSV) des Indiana-Stammes und des Herpes-simplex-Virus (HSV). Die Empfindlichkeit der A9-Zellen und ihre Reaktion auf diese Viren haben sie für die Untersuchung der viralen Replikation, der Pathogenese und möglicher antiviraler Behandlungen nützlich gemacht. In der Immunologie werden A9-Zellen in verschiedenen Forschungsbereichen eingesetzt. Sie sind ein wertvolles Modell für die Untersuchung von Immunreaktionen, der Antikörperproduktion, der Herstellung monoklonaler Antikörper und der Hybridomtechnologie. Aufgrund ihrer schnellen Vermehrung (Verdopplungszeit von etwa 24 Stunden) bieten A9-Zellen einen ausreichenden Zellvorrat für Experimente und nachgeschaltete Anwendungen. A9-Zellen haben eine fibroblastenähnliche Morphologie und haften am Kultursubstrat. A9-Zellen, die als tierische Zellen eingestuft werden und zum Hybridom-Zelltyp gehören, entstanden durch die Fusion von B-Lymphozyten aus Mus musculus (Maus) mit Myelomzellen derselben Spezies. Dank dieser einzigartigen Kombination weisen A9-Zellen Eigenschaften sowohl von B-Lymphozyten als auch von Myelomzellen auf. Insgesamt sind A9-Zellen eine gut etablierte fibroblastenähnliche Zelllinie, die zur Untersuchung von Virusinfektionen, insbesondere PRV, VSV und HSV, und in der Immunologie eingesetzt wird. |
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Organismus | Maus |
Gewebe | Subkutanes Bindegewebe, loses Bindegewebe und Fett, normal |
Synonyme | A-9, A9 (Hamprecht), A9(Hamprecht), AG 9, GM00346, GM-346, GM346, GM00346B |
Merkmale
Alter | 100 Tage alt |
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Geschlecht | Männlich |
Morphologie | Fibroblasten-ähnlich |
Wachstumseigenschaften | Adhärent |
Identifikatoren / Biologische Schutzstufe / Zitation
Zitat | A9 (Cytion Katalognummer 305166) |
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Biosicherheitsstufe | 1 |
Expression / Mutation
Antigenexpression | H-2k |
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Tumorigene | Ja, an nackten Mäusen. |
Handhabung
Nährboden | DMEM, w: 4,5 g/L Glucose, w: 4 mM L-Glutamin, w: 3,7 g/L NaHCO3, w: 1,0 mM Natriumpyruvat (Cytion-Artikelnummer 820300a) |
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Mittlere Supplemente | Supplemente des Mediums mit 10% FBS |
Passage-Lösung | Accutase |
Subkultivierung | Entfernen Sie das alte Medium von den adhärenten Zellen und waschen Sie sie mit PBS, das kein Kalzium und Magnesium enthält. Für T25-Kolben 3-5 ml PBS und für T75-Kolben 5-10 ml verwenden. Anschließend werden die Zellen vollständig mit Accutase bedeckt, wobei 1-2 ml für T25-Kolben und 2,5 ml für T75-Kolben verwendet werden. Lassen Sie die Zellen 8-10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren, um sie abzulösen. Nach der Inkubation mischen Sie die Zellen vorsichtig mit 10 ml Medium, um sie zu resuspendieren, und zentrifugieren sie dann 3 Minuten lang bei 300xg. Den Überstand verwerfen, die Zellen in frischem Medium resuspendieren und in neue Kolben überführen, die bereits frisches Medium enthalten. |
Splitverhältnis | 1: 3 bis 1: 4 |
Medienwechsel | 2 bis 3 Mal pro Woche |
Einfriermedium | Verwenden Sie als Kryokonservierungsmedium ein komplettes Wachstumsmedium (einschließlich FBS) + 10 % DMSO für eine angemessene Lebensfähigkeit nach dem Auftauen oder CM-1 (Cytion-Katalognummer 800100), das optimierte Osmoprotektoren und Stoffwechselstabilisatoren enthält, um die Erholung zu verbessern und kryoinduzierten Stress zu reduzieren. |
Handhabung von kryokonservierten Kulturen |
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Qualitätskontrolle / Genetisches Profil / HLA
Sterilität | Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen. Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft. |
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