Cellules de Wilms8
1 104,00 CAD$*
Les produits sont expédiés congelés, dans de la glace carbonique, à l'intérieur de cryotubes. Chaque cryotube contient généralement 3 × 10⁶ cellules pour les lignées adhérentes ou 5 × 10⁶ cellules pour les lignées en suspension (voir le certificat d'analyse du lot pour plus de détails).
Renseignements généraux
| Description | La lignée cellulaire Wilms8 a été dérivée d’une tumeur de Wilms primaire chez un patient pédiatrique présentant une mutation germinale du gène WT1. Cette lignée cellulaire se caractérise par une mutation non-sens homozygote dans le gène WT1 (c.1168 C>T, p.R390X), entraînant une perte complète de la fonction de WT1. Le gène WT1 est essentiel au développement normal du rein, et son inactivation est une caractéristique courante de certains sous-types agressifs de tumeurs de Wilms, en particulier ceux qui présentent une différenciation mésenchymateuse. Wilms8 constitue donc un modèle précieux pour étudier les effets de la perte de WT1 sur la tumorigenèse, en particulier dans le contexte des tumeurs de Wilms présentant une composante stromale marquée. En plus de la mutation du gène WT1, les cellules Wilms8 présentent une mutation du gène CTNNB1 (p.S45A), qui code pour la β-caténine, un régulateur clé de la voie de signalisation Wnt. La mutation au niveau de la sérine 45 perturbe le processus normal de phosphorylation qui conduit à la dégradation de la β-caténine, entraînant sa stabilisation et son accumulation dans le noyau. Il en résulte une activation constitutive de la voie de signalisation Wnt, qui stimule la prolifération cellulaire et contribue aux propriétés oncogéniques de la lignée cellulaire Wilms8. L’interaction entre la perte de WT1 et la signalisation Wnt aberrante dans Wilms8 en fait un modèle crucial pour comprendre les mécanismes moléculaires sous-jacents à ces voies dans la biologie de la tumeur de Wilms. Les cellules Wilms8 présentent un phénotype mésenchymateux, caractérisé par l’expression de la vimentine et l’absence de marqueurs épithéliaux tels que la cytokératine. Cela correspond à la différenciation stromale observée dans la tumeur d’origine. Les cellules démontrent une capacité limitée à subir une différenciation mésenchymateuse plus poussée, comme la formation de cellules de type musculaire dans des conditions spécifiques. Les analyses protéomiques de Wilms8 ont révélé l’activation de plusieurs récepteurs de tyrosine kinase (RTK), notamment le PDGFRβ et l’AXL, qui interviennent dans des processus clés tels que la survie, la migration et la prolifération cellulaires. L’activation des voies de signalisation en aval, en particulier les voies MAPK et PI3K/AKT, contribue davantage aux caractéristiques agressives des cellules Wilms8. Dans l’ensemble, la lignée cellulaire Wilms8 constitue un outil essentiel pour étudier les fondements moléculaires de la tumeur de Wilms, qui résulte d’une perte de WT1 et d’une signalisation Wnt aberrante. Ses caractéristiques génétiques et phénotypiques en font une plateforme robuste pour étudier l’interaction entre ces voies critiques et pour identifier des cibles thérapeutiques potentielles dans les tumeurs de Wilms présentant une composante stromale. |
|---|---|
| Organisme | Humain |
| Tissu | Rein |
| Maladie | Tumeur de Wilms |
| Applications | Modèle de culture cellulaire in vitro. Études biochimiques |
Caractéristiques
| Âge | 8 mois |
|---|---|
| Genre | Homme |
| Origine ethnique | caucasien |
| Morphologie | En forme de fuseau |
| Type de cellule | cellules de Wilms |
| Propriétés de croissance | Adepte |
Données réglementaires
| Référence | Wilms8 (numéro de catalogue Cytion 300416) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 9606 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_A5SJ |
Données biomoléculaires
| Profil mutationnel | Statut de la mutation WT1 : homozygote c.1168C>T, p.390x, LOH : , statut de la mutation CTNNB1 : hétérozygote TCT>GCT, p.S45A |
|---|
Manipulation
| Milieu de culture | Trousse MSCGM (de Lonza) |
|---|---|
| Réactif de dissociation | Accutase |
| Repiquage | Retirez l’ancien milieu des cellules adhérentes et lavez-les avec du PBS sans calcium ni magnésium. Pour les flacons T25, utilisez 3 à 5 ml de PBS, et pour les flacons T75, utilisez 5 à 10 ml. Ensuite, recouvrez complètement les cellules d’Accutase, en utilisant 1 à 2 ml pour les flacons T25 et 2,5 ml pour les flacons T75. Laissez les cellules incuber à température ambiante pendant 8 à 10 minutes afin de les détacher. Après l’incubation, mélangez délicatement les cellules avec 10 ml de milieu pour les remettre en suspension, puis centrifugez à 300 x g pendant 3 minutes. Éliminez le surnageant, remettez les cellules en suspension dans du milieu frais, puis transférez-les dans de nouveaux flacons contenant déjà du milieu frais. |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (contenant du sérum fœtal bovin) + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation, ou du CM-1 (référence Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
|
| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
|---|
-
Produits connexes
Produits connexes