Cellules de Wilms1
1 104,00 CAD$*
Les produits sont expédiés congelés, dans de la glace carbonique, à l'intérieur de cryotubes. Chaque cryotube contient généralement 3 × 10⁶ cellules pour les lignées adhérentes ou 5 × 10⁶ cellules pour les lignées en suspension (voir le certificat d'analyse du lot pour plus de détails).
Renseignements généraux
| Description | La lignée cellulaire Wilms1 a été dérivée d’un échantillon primaire de tumeur de Wilms prélevé chez un patient présentant de grosses tumeurs rénales bilatérales, caractéristiques de la tumeur de Wilms, un néphroblastome pédiatrique. Cette lignée cellulaire porte une mutation non-sens homozygote dans le gène WT1 (c.149 C>A, p.S50X), ce qui entraîne la production d’une protéine WT1 tronquée et non fonctionnelle. Le gène WT1, essentiel au développement et au fonctionnement des reins, est fréquemment muté dans la tumeur de Wilms, en particulier chez les patients présentant un sous-type stromal caractérisé par une différenciation mésenchymateuse ectopique. Les cellules Wilms1 constituent donc un modèle in vitro unique pour étudier les conséquences de la perte de fonction du gène WT1 sur la biologie tumorale. La lignée cellulaire Wilms1 présente un caryotype stable, sans anomalie chromosomique significative, ce qui permet une culture fiable à long terme. Ces cellules présentent un phénotype mésenchymateux, caractérisé par l’expression de la vimentine et l’absence de marqueurs épithéliaux tels que la cytokératine, ce qui correspond à leur origine stromale. De plus, cette lignée cellulaire fait preuve d’une capacité de différenciation mésenchymateuse limitée mais notable, notamment la capacité de se différencier en cellules de type musculaire dans des conditions appropriées. Cela fait de Wilms1 un outil inestimable pour l’étude des mécanismes moléculaires de la différenciation mésenchymateuse et de sa dérégulation dans la pathogenèse de la tumeur de Wilms. La lignée Wilms1 a également été utilisée pour étudier l’état d’activation des voies de signalisation clés impliquées dans la progression tumorale. Des analyses protéomiques ont montré que les cellules Wilms1 présentent une phosphorylation et une activation de plusieurs récepteurs tyrosine-kinases, notamment l’EGFR et le PDGFRβ, ainsi que des voies de signalisation MAPK en aval. Ces résultats soulignent la pertinence de la lignée cellulaire Wilms1 dans l’exploration d’approches thérapeutiques ciblées pour la tumeur de Wilms, en analysant le rôle de ces voies dans la survie, la prolifération et la différenciation des cellules cancéreuses. |
|---|---|
| Organisme | Humain |
| Tissu | Rein |
| Applications | Modèle de culture cellulaire in vitro. Études biochimiques |
| Synonymes | Wilms 1-2 l |
Caractéristiques
| Âge | 2 ans |
|---|---|
| Genre | Femme |
| Origine ethnique | caucasien |
| Morphologie | En forme de fuseau |
| Type de cellule | cellules de Wilms |
| Propriétés de croissance | Adepte |
Données réglementaires
| Référence | Wilms1 (numéro de catalogue Cytion 300411) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 9606 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_A5SC |
Données biomoléculaires
| Récepteurs exprimés | Récepteurs tyrosine-kinases : EGFR, EphA7, PDGFRalpha, FGFR1, PDGFRbeta, AxL |
|---|---|
| Tumorigène | Oui, chez les souris nues. Elle forme une tumeur composée de petites cellules, ce qui correspond à la tumeur de Wilms (les xénogreffes peuvent ne pas refléter entièrement les tumeurs de Wilms; voir E. Kunce Stroup, 2017). |
| Virus | VIH-1 : négatif, VHB : négatif, VHC : négatif |
| Profil mutationnel | Statut mutationnel du gène WT1 : homozygote c. 149 C>A, p.S50x, LOH : 11p11-11pter; statut mutationnel du gène CTNNB1 : hétérozygote TCT>TTT, p.S45F |
| Caryotype | 46, normal |
Manipulation
| Milieu de culture | Trousse MSCGM (de Lonza) |
|---|---|
| Réactif de dissociation | Accutase |
| Temps de doublement | 24 heures |
| Repiquage | Retirez l’ancien milieu des cellules adhérentes et lavez-les avec du PBS sans calcium ni magnésium. Pour les flacons T25, utilisez 3 à 5 ml de PBS, et pour les flacons T75, utilisez 5 à 10 ml. Ensuite, recouvrez complètement les cellules d’Accutase, en utilisant 1 à 2 ml pour les flacons T25 et 2,5 ml pour les flacons T75. Laissez les cellules incuber à température ambiante pendant 8 à 10 minutes afin de les détacher. Après l’incubation, mélangez délicatement les cellules avec 10 ml de milieu pour les remettre en suspension, puis centrifugez à 300 x g pendant 3 minutes. Éliminez le surnageant, remettez les cellules en suspension dans du milieu frais, puis transférez-les dans de nouveaux flacons contenant déjà du milieu frais. |
| Densité de semis | 1 × 10⁴ cellules/cm² |
| Renouvellement des fluides | 1 à 2 fois par semaine |
| Rétablissement après le dégel | Rapide |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (contenant du sérum fœtal bovin) + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation, ou du CM-1 (référence Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
|
| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
|---|
Certificat d'analyse (CoA)
| Numéro de lot | Type de certificat | Date | Numéro de catalogue |
|---|---|---|---|
| 300411-221 | Certificat d'analyse | 23. May. 2025 | 300411 |
| 300411-130524 | Certificat d'analyse | 23. May. 2025 | 300411 |
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