Cellules U2OS-CRISPR-NUP96-SNAP
1 104,00 CAD$*
Les produits sont expédiés congelés, dans de la glace carbonique, à l'intérieur de cryotubes. Chaque cryotube contient généralement 3 × 10⁶ cellules pour les lignées adhérentes ou 5 × 10⁶ cellules pour les lignées en suspension (voir le certificat d'analyse du lot pour plus de détails).
Renseignements généraux
| Description | La lignée cellulaire U-2 OS-CRISPR-NUP96-SNAP est une lignée cellulaire d’ostéosarcome génétiquement modifiée dérivée de la lignée cellulaire humaine parentale U-2 OS. Cette lignée cellulaire a été modifiée par édition génomique à l’aide de la technologie CRISPR/Cas9 afin d’intégrer un marqueur SNAP au gène NUP96, ce qui permet de visualiser et d’étudier la dynamique des complexes de pores nucléaires. Les complexes de pores nucléaires (NPC) sont essentiels à la régulation du transport nucléocytoplasmique, et la protéine NUP96 est un composant majeur du NPC, jouant un rôle central dans son intégrité structurelle et son fonctionnement. Dans le clone n° 33 de la lignée U-2 OS-CRISPR-NUP96-SNAP, l’intégration du marqueur SNAP au locus NUP96 permet la fixation spécifique et covalente de substrats fluorescents ou d’autres sondes chimiques pouvant être utilisés pour l’imagerie de cellules vivantes et d’autres essais biochimiques. Cette caractéristique en fait un outil inestimable pour étudier la dynamique moléculaire du transport nucléocytoplasmique, comprendre les pathologies liées au NPC et cribler des composés thérapeutiques qui affectent la fonction du NPC. La lignée cellulaire conserve également les caractéristiques de la lignée parentale U-2 OS, notamment un haut niveau de stabilité génétique et une culture aisée, ce qui la rend adaptée au criblage à haut débit et aux études approfondies en biologie cellulaire. En raison de la spécificité de la modification apportée au gène NUP96, le clone n° 33 de la lignée U-2 OS-CRISPR-NUP96-SNAP constitue un modèle unique pour l’étude détaillée des composants du NPC dans le contexte de la fonction et du dysfonctionnement cellulaires. Les chercheurs peuvent exploiter le système de marqueurs SNAP pour marquer de manière sélective et rapide la protéine NUP96, ce qui facilite la visualisation en temps réel de la dynamique du NPC dans des conditions physiologiques et pathologiques. Ce clone spécifique peut servir de plateforme robuste tant pour la recherche fondamentale que pour les études biomédicales appliquées, contribuant ainsi de manière significative aux domaines de la biologie cellulaire, de la génétique et de l’oncologie. |
|---|---|
| Organisme | Humain |
| Tissu | Os |
| Maladie | Ostéosarcome |
Caractéristiques
| Âge | 15 ans |
|---|---|
| Genre | Femme |
| Origine ethnique | caucasien |
| Propriétés de croissance | Adepte |
Données réglementaires
| Référence | U-2 OS-CRISPR-NUP96-SNAP (numéro de catalogue Cytion 300444) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 9606 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_B7FL |
| Déposant | Le laboratoire Ellenberg (EMBL) |
| Statut OGM | GMO-S1 : Cette lignée cellulaire d’ostéosarcome humain (U2OS-CRISPR-NUP96-SNAP, clone 33) contient une fusion NUP96-SNAP modifiée par CRISPR, facilitant le marquage chimique des pores nucléaires à l’aide du marqueur SNAP. Cette modification est intégrée de façon stable. Cette classification ne s’applique qu’en Allemagne et peut différer ailleurs. |
Données biomoléculaires
| Expression des protéines | NUP96-SNAP (protéine 96 du complexe des pores nucléaires, marqueur SNAP) |
|---|
Manipulation
| Milieu de culture | McCoys 5a, w : 3,0 g/L de glucose, w : stable; glutamine, w : 2,0 mM de pyruvate de sodium, w : 2,2 g/L de NaHCO₃ (référence Cytion 820200a) |
|---|---|
| Suppléments | Ajouter au milieu 10 % de FBS, 3,0 g/L de glucose, de la glutamine stable, 2,0 mM de pyruvate de sodium, 2,2 g/L de NaHCO₃ et 1 % de NEAA. |
| Réactif de dissociation | Accutase |
| Repiquage | Retirez l’ancien milieu des cellules adhérentes et lavez-les avec du PBS sans calcium ni magnésium. Pour les flacons T25, utilisez 3 à 5 ml de PBS, et pour les flacons T75, utilisez 5 à 10 ml. Ensuite, recouvrez complètement les cellules d’Accutase, en utilisant 1 à 2 ml pour les flacons T25 et 2,5 ml pour les flacons T75. Laissez les cellules incuber à température ambiante pendant 8 à 10 minutes afin de les détacher. Après l’incubation, mélangez délicatement les cellules avec 10 ml de milieu pour les remettre en suspension, puis centrifugez à 300 x g pendant 3 minutes. Éliminez le surnageant, remettez les cellules en suspension dans du milieu frais, puis transférez-les dans de nouveaux flacons contenant déjà du milieu frais. |
| Densité de semis | 1 × 10⁴ cellules/cm² |
| Renouvellement des fluides | 2 à 3 fois par semaine |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (contenant du sérum fœtal bovin) + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation, ou du CM-1 (référence Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
|
| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
|---|
Certificat d'analyse (CoA)
| Numéro de lot | Type de certificat | Date | Numéro de catalogue |
|---|---|---|---|
| 300444-040724 | Certificat d'analyse | 23. May. 2025 | 300444 |
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