Cellules HK Mad2-LAP/H2B-mCherry
1 104,00 CAD$*
Les produits sont expédiés congelés, dans de la glace carbonique, à l'intérieur de cryotubes. Chaque cryotube contient généralement 3 × 10⁶ cellules pour les lignées adhérentes ou 5 × 10⁶ cellules pour les lignées en suspension (voir le certificat d'analyse du lot pour plus de détails).
Renseignements généraux
| Description | La lignée cellulaire HK Mad2-LAP/H2B-mCherry est un modèle cellulaire génétiquement modifié largement utilisé pour l’étude de la ségrégation chromosomique et du point de contrôle de l’assemblage du fuseau pendant la mitose. Ces cellules sont dérivées de cellules HeLa Kyoto, une lignée cellulaire humaine robuste issue à l’origine d’un carcinome du col de l’utérus. La caractéristique HK Mad2-LAP (Mad2 marquée par un tag LAP) de cette lignée cellulaire facilite la visualisation et l’analyse fonctionnelle de la protéine Mad2, un composant essentiel du point de contrôle de l’assemblage du fuseau qui empêche le début de l’anaphase jusqu’à ce que tous les chromosomes soient correctement alignés au niveau de la plaque métaphasique. L’incorporation de H2B-mCherry, où l’histone H2B est marquée par la protéine fluorescente mCherry, permet l’imagerie en temps réel de la dynamique de la chromatine pendant la division cellulaire. Cette caractéristique fait de la lignée cellulaire HK Mad2-LAP/H2B-mCherry un excellent outil pour les techniques d’imagerie de cellules vivantes à haute résolution, permettant d’observer les mouvements chromosomiques et la progression mitotique dans les cellules humaines sous diverses conditions expérimentales. L’utilisation de marqueurs fluorescents facilite le suivi et la quantification précis, fournissant ainsi des renseignements précieux sur les mécanismes moléculaires régissant la régulation du cycle cellulaire et la stabilité chromosomique. |
|---|---|
| Organisme | Humain |
| Tissu | Col de l'utérus |
| Maladie | Carcinome |
| Synonymes | HeLa Kyoto Mad2-LAP et H2B-mCherry, HeLa Kyoto Mad2-LAP |
Caractéristiques
| Âge | 30 ans |
|---|---|
| Genre | Femme |
| Origine ethnique | Afro-Américain |
| Morphologie | Cellules de type épithélial présentant une forme de pierre en mosaïque |
| Propriétés de croissance | Monocouche, adhérente |
Données réglementaires
| Référence | HK Mad2-LAP/H2B-mCherry (numéro de catalogue Cytion 300920) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 9606 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_1D65 |
| Déposant | Le laboratoire Ellenberg (EMBL) |
| Statut OGM | GMO-S1 : Cette lignée HeLa Kyoto contient des constructions Mad2-LAP et H2B-mCherry permettant de visualiser la dynamique des points de contrôle du fuseau. Cette classification ne s’applique qu’en Allemagne et peut varier ailleurs. |
Données biomoléculaires
| Expression des protéines | Mad2-LAP/H2B-mCherry |
|---|
Manipulation
| Milieu de culture | DMEM, p/v : 4,5 g/L de glucose, p/v : 4 mM de L-glutamine, p/v : 3,7 g/L de NaHCO₃, p/v : 1,0 mM de pyruvate de sodium (référence Cytion 820300a) |
|---|---|
| Suppléments | Ajouter 10 % de FBS au milieu de culture |
| Réactif de dissociation | Accutase |
| Repiquage | Retirez l’ancien milieu des cellules adhérentes et lavez-les avec du PBS sans calcium ni magnésium. Pour les flacons T25, utilisez 3 à 5 ml de PBS, et pour les flacons T75, utilisez 5 à 10 ml. Ensuite, recouvrez complètement les cellules d’Accutase, en utilisant 1 à 2 ml pour les flacons T25 et 2,5 ml pour les flacons T75. Laissez les cellules incuber à température ambiante pendant 8 à 10 minutes afin de les détacher. Après l’incubation, mélangez délicatement les cellules avec 10 ml de milieu pour les remettre en suspension, puis centrifugez à 300 x g pendant 3 minutes. Éliminez le surnageant, remettez les cellules en suspension dans du milieu frais, puis transférez-les dans de nouveaux flacons contenant déjà du milieu frais. |
| Densité de semis | 1 × 10⁴ cellules/cm² |
| Renouvellement des fluides | 2 à 3 fois par semaine |
| Rétablissement après le dégel | Après décongélation, ensemencer les cellules à une densité de 5 × 10⁴ cellules/cm² et laisser les cellules se remettre du processus de congélation et adhérer pendant au moins 24 heures. |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (contenant du sérum fœtal bovin) + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation, ou du CM-1 (référence Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
|
| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
|---|
Certificat d'analyse (CoA)
| Numéro de lot | Type de certificat | Date | Numéro de catalogue |
|---|---|---|---|
| 300920-117 | Certificat d'analyse | 23. May. 2025 | 300920 |
| 300920-210524 | Certificat d'analyse | 23. May. 2025 | 300920 |
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