Cellules HK EGFP-LaminB1/H2B-mCherry
1 104,00 CAD$*
Les produits sont expédiés congelés, dans de la glace carbonique, à l'intérieur de cryotubes. Chaque cryotube contient généralement 3 × 10⁶ cellules pour les lignées adhérentes ou 5 × 10⁶ cellules pour les lignées en suspension (voir le certificat d'analyse du lot pour plus de détails).
Renseignements généraux
| Description | La lignée cellulaire HK EGFP-LaminB1/H2B-mCherry est un modèle in vitro dérivé de la lignée HeLa Kyoto, conçu pour la visualisation en temps réel de la dynamique de la chromatine et de l’architecture nucléaire dans des cellules vivantes. Cette lignée cellulaire exprime deux fusions de protéines fluorescentes : l’EGFP (protéine fluorescente verte améliorée) fusionnée à la Lamine B1, et la mCherry (une protéine fluorescente rouge) fusionnée à l’histone H2B. La fusion de l’EGFP avec la lamine B1 permet d’observer l’enveloppe nucléaire et la lamina nucléaire, des structures essentielles au maintien de l’intégrité et de la fonctionnalité du noyau. Les protéines de lamine sont des protéines de filaments intermédiaires de type V qui forment un réseau sous-jacent à la membrane nucléaire interne, jouant des rôles clés dans la stabilité nucléaire, l’organisation de la chromatine et la régulation génique. D’autre part, l’histone H2B marquée par mCherry permet la visualisation de la chromatine à l’intérieur du noyau. Les histones sont des composants fondamentaux du nucléosome, impliquées dans l’organisation de l’ADN en chromatine, ce qui les rend cruciales pour la réplication, la réparation et la transcription de l’ADN. Le marqueur mCherry sur l’histone H2B produit une fluorescence rouge vif qui contraste avec la fluorescence verte de l’EGFP, permettant ainsi une imagerie double simultanée de la structure nucléaire et de la chromatine lors d’expériences sur des cellules vivantes. Cette lignée cellulaire est couramment utilisée dans les études portant sur la mécanique nucléaire, la mitose et la stabilité du génome, offrant une vision dynamique des processus cellulaires qui sont autrement difficiles à observer en temps réel. |
|---|---|
| Organisme | Humain |
| Tissu | Col de l'utérus |
| Maladie | Carcinome |
| Site métastatique | Site de la tumeur primaire (col de l'utérus) |
| Applications | Lamina nucléaire et organisation de la chromatine; dynamique de la lamine B1; imagerie de la chromatine H2B; fluorescence bicolore sur cellules vivantes; mécanique nucléaire; mitose; stabilité du génome; biologie de l'enveloppe nucléaire |
| Synonymes | HeLa Kyoto EGFP-LaminB1 et H2B-mCherry |
Caractéristiques
| Âge | 30 ans |
|---|---|
| Genre | Femme |
| Origine ethnique | Afro-Américain |
| Morphologie | Cellules de type épithélial présentant une forme de pierre en mosaïque |
| Type de cellule | Cellules épithéliales |
| Propriétés de croissance | Monocouche, adhérente |
Données réglementaires
| Référence | HK EGFP-LaminB1/H2B-mCherry (numéro de catalogue Cytion 300919) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 9606 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_UR41 |
| Déposant | Le laboratoire Ellenberg (EMBL) |
| Statut OGM | GMO-S1 : Cette lignée HeLa Kyoto contient des constructions EGFP-Lamin B1 et H2B-mCherry destinées à l’imagerie de l’enveloppe nucléaire et de l’organisation de la chromatine. Cette classification ne s’applique qu’en Allemagne et peut varier ailleurs. |
Données biomoléculaires
| Expression des protéines | EGFP-LaminB1/H2B-mCherry |
|---|---|
| Produits | Histone H2B |
Manipulation
| Milieu de culture | DMEM, p/v : 4,5 g/L de glucose, p/v : 4 mM de L-glutamine, p/v : 3,7 g/L de NaHCO₃, p/v : 1,0 mM de pyruvate de sodium (référence Cytion 820300a) |
|---|---|
| Suppléments | Ajouter 10 % de FBS au milieu de culture |
| Réactif de dissociation | Accutase |
| Repiquage | Retirez l’ancien milieu des cellules adhérentes et lavez-les avec du PBS sans calcium ni magnésium. Pour les flacons T25, utilisez 3 à 5 ml de PBS, et pour les flacons T75, utilisez 5 à 10 ml. Ensuite, recouvrez complètement les cellules d’Accutase, en utilisant 1 à 2 ml pour les flacons T25 et 2,5 ml pour les flacons T75. Laissez les cellules incuber à température ambiante pendant 8 à 10 minutes afin de les détacher. Après l’incubation, mélangez délicatement les cellules avec 10 ml de milieu pour les remettre en suspension, puis centrifugez à 300 x g pendant 3 minutes. Éliminez le surnageant, remettez les cellules en suspension dans du milieu frais, puis transférez-les dans de nouveaux flacons contenant déjà du milieu frais. |
| Densité de semis | 1 × 10⁴ cellules/cm² |
| Renouvellement des fluides | 2 à 3 fois par semaine |
| Rétablissement après le dégel | Après décongélation, ensemencer les cellules à une densité de 5 × 10⁴ cellules/cm² et laisser les cellules se remettre du processus de congélation et adhérer pendant au moins 24 heures. |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (contenant du sérum fœtal bovin) + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation, ou du CM-1 (référence Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
|
| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
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