Wilms6-Zellen
800,00 €*
Die Produkte werden tiefgefroren in Trockeneis in Kryoröhrchen versandt. Jedes Kryoröhrchen enthält in der Regel 3 × 10 6 Zellen für adhärente Linien oder 5 × 106 Zellen für Suspensionslinien (Einzelheiten finden Sie im Chargenzertifikat).
Allgemeine Informationen
| Beschreibung | Die Wilms6-Zelllinie wurde aus einem primären Wilms-Tumor eines pädiatrischen Patienten mit einer WT1-Keimbahnmutation hergestellt. Diese Zelllinie ist durch eine homozygote Nonsense-Mutation im WT1-Gen (c.1168 C>T, p.R390X) definiert, die zu einem verkürzten und nicht funktionsfähigen WT1-Protein führt. WT1 ist ein entscheidender Regulator der Nierenentwicklung, und sein Verlust wird stark mit Wilms-Tumoren in Verbindung gebracht, insbesondere in Fällen, die eine mesenchymale Differenzierung aufweisen. Die Wilms6-Zelllinie ist ein wichtiges Modell für die Untersuchung der tumorerzeugenden Auswirkungen eines vollständigen WT1-Verlustes, insbesondere im Zusammenhang mit Tumoren, die sowohl epitheliale als auch mesenchymale Merkmale aufweisen. Wilms6-Zellen tragen auch eine Mutation im CTNNB1-Gen, die speziell Serin 45 (p.S45F) betrifft, eine Schlüsselstelle für die Phosphorylierung, die den β-Catenin-Abbau reguliert. Diese Mutation führt zu einer Stabilisierung und nukleären Akkumulation von β-Catenin, was zu einer konstitutiven Aktivierung des Wnt-Signalwegs führt. Die abnormale Aktivierung des Wnt-Signalwegs ist ein bekannter Treiber der Zellproliferation und Tumorigenese in Wilms-Tumoren, was Wilms6 zu einem wertvollen Instrument für die Untersuchung der Rolle der Dysregulation des Wnt-Signalwegs in Tumoren mit WT1-Mutationen macht. Phänotypisch weisen Wilms6-Zellen eine mesenchymale Morphologie auf, mit einer starken Expression von Vimentin und dem Fehlen epithelialer Marker wie Cytokeratin, was die stromale Natur des ursprünglichen Tumors widerspiegelt. Es hat sich gezeigt, dass diese Zellen ein begrenztes, aber bemerkenswertes Differenzierungspotenzial besitzen, einschließlich der Fähigkeit, sich unter bestimmten Bedingungen in muskelähnliche Zellen zu differenzieren, was die in einigen Wilms-Tumoren beobachtete mesenchymale Differenzierung widerspiegelt. Proteomische Untersuchungen von Wilms-Tumoren6 haben die Aktivierung mehrerer Rezeptor-Tyrosinkinasen (RTKs), einschließlich PDGFRβ und AXL, identifiziert, die an der Förderung des Zellüberlebens, der Proliferation und der Migration beteiligt sind. Die nachgeschaltete Aktivierung von Signalwegen wie MAPK und PI3K/AKT unterstreicht die aggressive Natur dieser Zelllinie. Insgesamt dient die Wilms6-Zelllinie als wichtiges Modell für die Erforschung der molekularen Mechanismen, die der Entwicklung von Wilms-Tumoren zugrunde liegen, insbesondere bei vollständigem WT1-Verlust in Kombination mit einer Aktivierung der Wnt-Signalwege. Ihre genetischen und phänotypischen Eigenschaften machen sie zu einer ausgezeichneten Plattform für die Untersuchung des Zusammenspiels zwischen WT1-Mangel und abweichenden Signalwegen, was Einblicke in potenzielle therapeutische Ziele für diesen aggressiven Tumortyp bietet. |
|---|---|
| Organismus | Menschen |
| Gewebe | Niere |
| Krankheit | Wilms-Tumor |
| Anwendungen | In-vitro-Zellkulturmodell. Biochemische Studien |
Merkmale
| Alter | 15 Monate |
|---|---|
| Geschlecht | Männlich |
| Ethnizität | Kaukasisch |
| Morphologie | Spindelförmig |
| Zelltyp | Wilms-Zellen |
| Wachstumseigenschaften | Adhärent |
Regulatorische Daten
| Zitat | Wilms6 (Cytion Katalognummer 300415) |
|---|---|
| Biosicherheitsstufe | 1 |
| NCBI_TaxID | 9606 |
| CellosaurusAccession | CVCL_A5SI |
| Hinterleger | B. Royer-Pokora |
Biomolekulare Daten
| Mutationsprofil | WT1-Mutationsstatus: homozygot c.1168C>T, p.R390x, LOH: 11p11-11pter, CTNNB1-Mutationsstatus: homozygot del TCT, p.DS45 |
|---|
Handhabung
| Nährboden | MSCGM-Kit (von Lonza) |
|---|---|
| Dissoziationsreagenz | Accutase |
| Subkultivierung | Entfernen Sie das alte Medium von den adhärenten Zellen und waschen Sie sie mit PBS, das kein Kalzium und Magnesium enthält. Für T25-Kolben 3-5 ml PBS und für T75-Kolben 5-10 ml verwenden. Anschließend werden die Zellen vollständig mit Accutase bedeckt, wobei 1-2 ml für T25-Kolben und 2,5 ml für T75-Kolben verwendet werden. Lassen Sie die Zellen 8-10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren, um sie abzulösen. Nach der Inkubation mischen Sie die Zellen vorsichtig mit 10 ml Medium, um sie zu resuspendieren, und zentrifugieren sie dann 3 Minuten lang bei 300xg. Den Überstand verwerfen, die Zellen in frischem Medium resuspendieren und in neue Kolben überführen, die bereits frisches Medium enthalten. |
| Einfriermedium | Als Kryokonservierungsmedium verwenden wir komplettes Wachstumsmedium (einschließlich FBS) + 10 % DMSO für eine angemessene Lebensfähigkeit nach dem Auftauen oder CM-1 (Cytion Katalognummer 800100), das optimierte Osmoprotektoren und Stoffwechselstabilisatoren enthält, um die Erholung zu verbessern und kryoinduzierten Stress zu reduzieren. |
| Auftauen und Kultivierung von Zellen |
|
| Inkubationsatmosphäre | 37°C, 5%CO2, befeuchtete Atmosphäre. |
| Kolbenbeschichtung | Keine |
| Verfahren zum Einfrieren | Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager. |
| Versandbedingungen | Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager. |
| Lagerungsbedingungen | Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel. |
Qualitätskontrolle / Genetisches Profil / HLA
| Sterilität | Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen. Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft. |
|---|---|
| STR-Profil |
Amelogenin: x,y
CSF1PO: 11,12
D13S317: 8,11
D16S539: 9,11
D5S818: 8,9
D7S820: 8,11
TH01: 9,9
TPOX: 11,11
vWA: 16,18
D3S1358: 15,16
D21S11: 28,30
D18S51: 12,16
Penta E: 8,13
Penta D: 11,11
D8S1179: 11,13
FGA: 22,23
|
| HLA-Allele |
A*: '02:05:01, '29:01:01
B*: '07:05:01, '13:02:01
C*: '06:02:01, '15:05:02
DRB1*: '07:01:01, '10:01:01
DQA1*: '01:05:01, '02:01:01
DQB1*: '02:02:01, '05:01:01
DPB1*: '04:02:01, '17:01:01
E: '01:01:01
|
Analysezertifikat (CoA)
| Losnummer | Zertifikat Typ | Date | Katalognummer |
|---|---|---|---|
| 300415-221 | Analysezertifikat | 23. May. 2025 | 300415 |
Materialübertragungsvertrag
Wenn Sie die Cytion-Zelllinien ausschließlich für interne Forschungszwecke an einem einzigen Forschungsstandort verwenden möchten, füllen Sie bitte unsere Materialübertragungsvereinbarung (MTA) aus, unterschreiben Sie sie und reichen Sie sie zusammen mit Ihrer Bestellung ein.
Für alle kommerziellen Anwendungen – einschließlich, aber nicht beschränkt auf Dienstleistungen gegen Entgelt, Qualitätskontrolltests, Produktfreigaben, diagnostische Anwendungen oder behördliche Studien – füllen Sie bitte das Formular zur beabsichtigten Verwendung aus, damit wir eine auf Ihr Projekt zugeschnittene Vereinbarung vorbereiten können.
Bitte beachten Sie: Die MTA gilt nur für bestimmte Zelllinien. Wenn dieser Hinweis und das MTA-Dokument auf einer Produktseite erscheinen, ist die Vereinbarung anwendbar. Für Zelllinien, die nicht unter die MTA fallen, wird kein Verweis auf die Vereinbarung angezeigt. Die MTA gilt nicht für Kunden in Amerika, China oder Taiwan. Bitte wenden Sie sich an unsere US-Niederlassung, um die entsprechende Vereinbarung zu erhalten.