Wilms3-Zellen
800,00 €*
Die Produkte werden tiefgefroren in Trockeneis in Kryoröhrchen versandt. Jedes Kryoröhrchen enthält in der Regel 3 × 10 6 Zellen für adhärente Linien oder 5 × 106 Zellen für Suspensionslinien (Einzelheiten finden Sie im Chargenzertifikat).
Allgemeine Informationen
| Beschreibung | Die Wilms3-Zelllinie wurde aus einem primären Wilms-Tumor eines pädiatrischen Patienten gewonnen, der durch eine somatische WT1-Mutation gekennzeichnet ist. Im Gegensatz zu vielen anderen Wilms-Tumor-Zelllinien weist Wilms3 eine heterozygote Frameshift-Mutation im WT1-Gen (c.1293-1294insA, p.V432SfsX87) auf, die zur Produktion eines verkürzten WT1-Proteins führt. Dieser teilweise Verlust der WT1-Funktion wird mit der Entwicklung von Tumoren in Verbindung gebracht, die einen stromalen oder mesenchymalen Phänotyp aufweisen. Die WT1-Mutation in Wilms3 ist jedoch nicht homozygot, was die Untersuchung noch komplexer macht, da eine gewisse WT1-Funktion erhalten bleibt, die die Tumorbiologie anders beeinflussen kann als bei Zelllinien mit vollständigem WT1-Verlust. Wilms3 trägt auch eine Mutation im CTNNB1-Gen, die speziell das Threonin 41 (p.T41A) betrifft, das eine entscheidende Rolle im Wnt-Signalweg spielt. Diese Mutation stabilisiert β-Catenin, verhindert seinen Abbau und führt zu einer konstitutiven Aktivierung des Wnt-Signalwegs. Die anhaltende Aktivierung des Wnt-Signalwegs treibt die Zellproliferation an und trägt zur Tumorentstehung in Wilms3 bei, was es zu einem Schlüsselmodell für die Untersuchung der Auswirkungen von CTNNB1-Mutationen im Zusammenhang mit einem teilweise funktionalen WT1-Hintergrund macht. Phänotypisch weisen Wilms3-Zellen eine mesenchymal-ähnliche Morphologie auf, die Vimentin exprimiert und kein Zytokeratin aufweist, was mit den im ursprünglichen Tumor beobachteten stromalen Eigenschaften übereinstimmt. Diese Zellen weisen ein begrenztes Differenzierungspotenzial auf und sind in der Lage, sich unter bestimmten Bedingungen mesenchymal zu differenzieren. Proteomanalysen von Wilms3 haben die Aktivierung mehrerer Rezeptortyrosinkinasen (RTKs), darunter PDGFRβ und AXL, gezeigt, die das Überleben und die Vermehrung der Zellen unterstützen. Außerdem werden nachgeschaltete Signalwege wie MAPK und PI3K/AKT aktiviert, was die bösartigen Eigenschaften der Wilms3-Zellen verstärkt. Ein einzigartiger Aspekt von Wilms3 ist seine partielle WT1-Funktionalität, die eine andere Perspektive auf die Frage eröffnet, wie WT1-Mutationen zur Biologie des Wilms-Tumors beitragen, wenn die Mutation nicht vollständig ist. Das Zusammenspiel von WT1 und Wnt-Signalen in Wilms3 bietet eine wertvolle Gelegenheit, die differenzierte Rolle dieser Signalwege bei der Tumorentwicklung zu untersuchen. Insgesamt dient Wilms3 als wichtiges Modell für die Untersuchung der molekularen Mechanismen, die dem Wilms-Tumor bei partiellem WT1-Verlust und konstitutiver Aktivierung des Wnt-Signalwegs zugrunde liegen. |
|---|---|
| Organismus | Menschen |
| Gewebe | Niere |
| Krankheit | Wilms-Tumor |
| Anwendungen | In-vitro-Zellkulturmodell. Biochemische Studien |
Merkmale
| Alter | 11-12 Monate |
|---|---|
| Geschlecht | Männlich |
| Ethnizität | Kaukasisch |
| Morphologie | Spindelförmig |
| Zelltyp | Wilms-Zellen |
| Wachstumseigenschaften | Adhärent |
Regulatorische Daten
| Zitat | Wilms3 (Cytion Katalognummer 300414) |
|---|---|
| Biosicherheitsstufe | 1 |
| NCBI_TaxID | 9606 |
| CellosaurusAccession | CVCL_A5SF |
| Hinterleger | B. Royer-Pokora |
Biomolekulare Daten
| Mutationsprofil | WT1-Mutationsstatus: homozygot c.1293-1294insA, p.V432fsx87, LOH: 11p11-11pter, CTNNB1-Mutationsstatus: Wildtyp |
|---|
Handhabung
| Nährboden | MSCGM-Kit (von Lonza) |
|---|---|
| Dissoziationsreagenz | Accutase |
| Subkultivierung | Entfernen Sie das alte Medium von den adhärenten Zellen und waschen Sie sie mit PBS, das kein Kalzium und Magnesium enthält. Für T25-Kolben 3-5 ml PBS und für T75-Kolben 5-10 ml verwenden. Anschließend werden die Zellen vollständig mit Accutase bedeckt, wobei 1-2 ml für T25-Kolben und 2,5 ml für T75-Kolben verwendet werden. Lassen Sie die Zellen 8-10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren, um sie abzulösen. Nach der Inkubation mischen Sie die Zellen vorsichtig mit 10 ml Medium, um sie zu resuspendieren, und zentrifugieren sie dann 3 Minuten lang bei 300xg. Den Überstand verwerfen, die Zellen in frischem Medium resuspendieren und in neue Kolben überführen, die bereits frisches Medium enthalten. |
| Einfriermedium | Als Kryokonservierungsmedium verwenden wir komplettes Wachstumsmedium (einschließlich FBS) + 10 % DMSO für eine angemessene Lebensfähigkeit nach dem Auftauen oder CM-1 (Cytion Katalognummer 800100), das optimierte Osmoprotektoren und Stoffwechselstabilisatoren enthält, um die Erholung zu verbessern und kryoinduzierten Stress zu reduzieren. |
| Auftauen und Kultivierung von Zellen |
|
| Inkubationsatmosphäre | 37°C, 5%CO2, befeuchtete Atmosphäre. |
| Kolbenbeschichtung | Keine |
| Verfahren zum Einfrieren | Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager. |
| Versandbedingungen | Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager. |
| Lagerungsbedingungen | Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel. |
Qualitätskontrolle / Genetisches Profil / HLA
| Sterilität | Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen. Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft. |
|---|---|
| STR-Profil |
Amelogenin: x,y
CSF1PO: 11,12
D13S317: 12,13
D16S539: 9,11
D5S818: 9,9
D7S820: 10,11
TH01: 6,6
TPOX: 8,8
vWA: 16,17
D3S1358: 15,16
D21S11: 29,31
D18S51: 13,17
Penta E: 7,10
Penta D: 9,13
D8S1179: 10,11
FGA: 22,24
|
| HLA-Allele |
A*: '03:01:01
B*: '35:01:01, '35:03:01
C*: '04:01:01
DRB1*: '04:03:01, '11:04:01
DQA1*: '03:01:01, '05:05:01
DQB1*: '03:01:01, '03:02:01
DPB1*: '01:01:01, '04:01:01
E: '01:03:02, '01:06:01
|
Analysezertifikat (CoA)
| Losnummer | Zertifikat Typ | Date | Katalognummer |
|---|---|---|---|
| 300414-221 | Analysezertifikat | 23. May. 2025 | 300414 |
Materialübertragungsvertrag
Wenn Sie die Cytion-Zelllinien ausschließlich für interne Forschungszwecke an einem einzigen Forschungsstandort verwenden möchten, füllen Sie bitte unsere Materialübertragungsvereinbarung (MTA) aus, unterschreiben Sie sie und reichen Sie sie zusammen mit Ihrer Bestellung ein.
Für alle kommerziellen Anwendungen – einschließlich, aber nicht beschränkt auf Dienstleistungen gegen Entgelt, Qualitätskontrolltests, Produktfreigaben, diagnostische Anwendungen oder behördliche Studien – füllen Sie bitte das Formular zur beabsichtigten Verwendung aus, damit wir eine auf Ihr Projekt zugeschnittene Vereinbarung vorbereiten können.
Bitte beachten Sie: Die MTA gilt nur für bestimmte Zelllinien. Wenn dieser Hinweis und das MTA-Dokument auf einer Produktseite erscheinen, ist die Vereinbarung anwendbar. Für Zelllinien, die nicht unter die MTA fallen, wird kein Verweis auf die Vereinbarung angezeigt. Die MTA gilt nicht für Kunden in Amerika, China oder Taiwan. Bitte wenden Sie sich an unsere US-Niederlassung, um die entsprechende Vereinbarung zu erhalten.