Volumen: 100 ml Lagerung: ≤-15°C Sterilität: Steril-gefiltert
Antibiotika-/Antimykotika-Lösung (100x) ist ein steriles, gebrauchsfertiges Konzentrat zur Verringerung des Risikos einer mikrobiellen Kontamination in Zellkulturen und ähnlichen Laboranwendungen. Diese 100-fache Lösung enthält eine bewährte Kombination aus Penicillin, Streptomycin und Amphotericin B, die ein breites antimikrobielles Wirkungsspektrum gegen grampositive und gramnegative Bakterien, Hefen und filamentöse Pilze bietet. Die Formulierung eignet sich für den Einsatz in eukaryotischen Zellkulturen, bakteriellen Medien und anderen kontaminationsanfälligen Systemen und unterstützt saubere und konsistente Laborabläufe.
Anwendung und Vorteile Diese Lösung wurde für routinemäßige Forschungsprotokolle optimiert und wird häufig zur Aufrechterhaltung aseptischer Bedingungen in Zellkultur-Workflows verwendet. Sie bietet zuverlässige Leistung in kontaminationsanfälligen Umgebungen und hilft Forschern, das Risiko einer mikrobiellen Überwucherung zu reduzieren, ohne die Gesundheit der Zellen oder die Reproduzierbarkeit der Experimente zu beeinträchtigen. Die steril gefilterte Formulierung macht zusätzliche Solubilisierungsschritte überflüssig, unterstützt eine rationalisierte Medienvorbereitung und reduziert die Variabilität in den täglichen Laborabläufen.
Verwendung und Kompatibilität Um Standard-Arbeitskonzentrationen zu erreichen, verdünnen Sie die Lösung 1:100 in Ihr komplettes Kulturmedium. Das Produkt ist mit einer breiten Palette von Säugetierzelllinien und Basalmedien kompatibel. Dank der konstanten Verfügbarkeit der Vorräte profitieren Forscher von einer zuverlässigen Lieferkontinuität und einer vereinfachten Logistikplanung. Die Lösung sollte bei ≤ -15 °C gelagert und vor wiederholten Gefrier-Auftau-Zyklen geschützt werden, um die Stabilität zu erhalten. Nur für den Forschungsgebrauch. Nicht zur Verwendung in diagnostischen oder therapeutischen Verfahren. Nicht zur Anwendung bei Menschen oder Tieren.
Volumen: 100 ml Lagerung: +2°C bis +8°C Sterilität: Steril-gefiltert
MEM Non-Essential Amino Acids (100x) ist ein steriles Ergänzungsmittel zur Verbesserung des Zellwachstums und der Lebensfähigkeit in Säugetierzellkultursystemen. Die Formulierung entspricht einem 100-fachen Konzentrat der nicht-essentiellen Aminosäuren, die im Standard Minimum Essential Medium (MEM) enthalten sind, und ermöglicht die direkte Ergänzung von Basalmedien mit minimaler Vorbereitung.
Anwendung und Vorteile Dieses Supplement bietet einen zusätzlichen Aminosäurepool für schnell proliferierende Zellen oder für Zelllinien, die die Fähigkeit verloren haben, nicht-essentielle Aminosäuren de novo zu synthetisieren. Durch die Erleichterung der Stoffwechselbelastung bei der Biosynthese unterstützt es eine verbesserte Wachstumskinetik, eine längere Lebensfähigkeit und eine größere experimentelle Konsistenz
- insbesondere bei nährstoffsensitiven oder hochdichten Kulturen.
Zusammensetzung und Verwendung Die Lösung enthält Glycin, L-Alanin, L-Asparagin, L-Asparaginsäure, L-Glutaminsäure, L-Prolin und L-Serin. Sie ist mit MEM und den meisten anderen Standardmedien kompatibel. Zur Verwendung 1:100 in das endgültige Kulturmedium verdünnen. Dieses Produkt ist steril gefiltert und kann ohne zusätzliche Arbeitsschritte verwendet werden. Nur für Forschungszwecke geeignet. Nicht zur Verwendung in diagnostischen oder therapeutischen Verfahren. Nicht zur Verwendung bei Menschen oder Tieren.
- eine schonende Alternative zu Trypsin
Accutase ist eine Zellablösungslösung, die die Zellkulturindustrie revolutioniert. Es ist eine Mischung aus proteolytischen und kollagenolytischen Enzymen, die die Wirkung von Trypsin und Kollagenase nachahmt. Im Gegensatz zu Trypsin enthält Accutase keine Säugetier
- oder Bakterienbestandteile und ist sehr viel schonender für die Zellen, was es zu einer idealen Lösung für die routinemäßige Ablösung von Zellen von Standardplastikgefäßen für die Gewebekultur und adhäsionsbeschichteten Plastikgefäßen macht. In diesem Blogbeitrag gehen wir auf die Vorteile und Einsatzmöglichkeiten von Accutase ein und zeigen, wie es die Zellkultur verändert.
Vorteile von Accutase
Accutase hat mehrere Vorteile gegenüber herkömmlichen Trypsinlösungen. Erstens kann es immer dann eingesetzt werden, wenn eine sanfte und effiziente Ablösung von adhärenten Zelllinien erforderlich ist, und ist somit ein direkter Ersatz für Trypsin. Zweitens funktioniert Accutase sehr gut bei embryonalen und neuronalen Stammzellen, und es hat sich gezeigt, dass die Lebensfähigkeit dieser Zellen nach der Passage erhalten bleibt. Drittens bewahrt Accutase die meisten Epitope für die anschließende durchflusszytometrische Analyse, was es ideal für die Analyse von Zelloberflächenmarkern macht.
Außerdem muss Accutase bei der Passage von adhärenten Zellen nicht neutralisiert werden. Durch die Zugabe weiterer Medien nach der Zellteilung wird die Accutase verdünnt, so dass sie nicht mehr in der Lage ist, Zellen abzulösen. Dadurch entfällt der Schritt der Inaktivierung, und die Zellkulturtechniker sparen Zeit. Schließlich muss Accutase nicht aliquotiert werden, und eine Flasche ist im Kühlschrank 2 Monate lang haltbar.
Anwendungen von Accutase
Accutase ist ein direkter Ersatz für Trypsinlösung und kann für die Passage von Zelllinien verwendet werden. Darüber hinaus eignet sich Accutase gut zum Ablösen von Zellen für die Analyse vieler Zelloberflächenmarker mittels Durchflusszytometrie und für die Zellsortierung. Andere nachgeschaltete Anwendungen der Accutase-Behandlung umfassen die Analyse von Zelloberflächenmarkern, Viruswachstumstests, Zellproliferation, Tumorzellmigrationsassays, routinemäßige Zellpassage, Produktionsskalierung (Bioreaktor) und Durchflusszytometrie.
Zusammensetzung von Accutase
Accutase enthält keine Bestandteile von Säugetieren oder Bakterien und ist eine natürliche Enzymmischung mit proteolytischer und kollagenolytischer Enzymaktivität. Es ist in einer viel niedrigeren Konzentration als Trypsin und Kollagenase formuliert, wodurch es weniger toxisch und sanfter, aber genauso wirksam ist.
Wirksamkeit von Accutase
Accutase ist nachweislich effizient bei der Ablösung von Primär
- und Stammzellen und erhält die hohe Lebensfähigkeit der Zellen im Vergleich zu Enzymen tierischen Ursprungs wie Trypsin. 100 % der Zellen werden nach 10 Minuten zurückgewonnen, und dank der Selbstverdauung von Accutase ist es unbedenklich, Zellen bis zu 45 Minuten in Accutase zu belassen.
Zusammenfassung
Zusammenfassend lässt sich sagen, dass Accutase eine leistungsstarke Lösung ist, die das Spiel in der Zellkultur verändert. Mit seiner sanften Natur, Effizienz und Vielseitigkeit ist Accutase die ideale Alternative zu Trypsin. Wenn Sie nach einer zuverlässigen und effizienten Lösung für die Zellablösung suchen, ist Accutase die richtige Lösung für Sie.
Was ist in EMEM enthalten?
EMEM ist eine modifizierte Version von Eagle's Minimum Essential Medium und enthält Earle's Balanced Salt Solution, nicht-essentielle Aminosäuren, L-Glutamin, Natriumpyruvat und Natriumbicarbonat. Es ist wichtig zu beachten, dass diese Menge an Natriumbicarbonat für die Verwendung bei 5 % CO2 in der Luft bestimmt ist. Um seine Wirksamkeit zu erhalten, wird empfohlen, das Medium bei 2°C bis 8°C im Dunkeln zu lagern, wenn es nicht verwendet wird.
Wozu wird EMEM verwendet?
Eagle's minimal essential medium (EMEM) ist ein Zellkulturmedium, das Zellen in Gewebekulturen erhalten kann. Das Medium enthält höhere Konzentrationen von Aminosäuren, die eine genauere Annäherung an die Proteinzusammensetzung von kultivierten Säugetierzellen ermöglichen. EMEM kann für die Kultivierung verschiedener Zellen verwendet werden, darunter Fibroblasten, menschliche Leberkrebszellen (HepG2) und Astrozytenzellen aus fötalen Hirnvorläuferzellen (PDA). Es wird in der Regel in Gegenwart von fötalem Rinderserum (FBS), Kalbs
- oder Pferdeserum verwendet.
Wie unterscheidet sich EMEM von anderen Zellkulturmedien?
EMEM und Dulbecco's modified Eagle's medium (DMEM) haben zwar einige Gemeinsamkeiten, unterscheiden sich aber auch. Beide Medien sind proteinarm und enthalten die Aminosäuren, Salze, Glukose und Vitamine, die erforderlich sind, um eine Zelle mit Energie zu versorgen und sie in der Gewebekultur zu erhalten. Die DMEM-Formulierung ist jedoch so modifiziert, dass sie bis zu viermal mehr Vitamine und Aminosäuren und zwei
- bis viermal mehr Glukose enthält als EMEM. Es sei darauf hingewiesen, dass sich EMEM auch von der ursprünglichen MEM-Formulierung unterscheidet.
Qualitätskontrolle
Steril gefiltert
Lagerung und Haltbarkeit
Vor Licht geschützt bei +2°C bis +8°C lagern.
Nach dem Öffnen bei 4°C lagern und innerhalb von 6-8 Wochen aufbrauchen.
Versandbedingungen
Umgebungstemperatur
Pflege
Gekühlt bei +2°C bis +8°C im Dunkeln aufbewahren. Vermeiden Sie Einfrieren und häufiges Erwärmen auf +37°C, da dies die Produktqualität beeinträchtigt.
Erwärmen Sie das Medium nicht über 37°C und verwenden Sie keine unkontrollierten Wärmequellen wie Mikrowellengeräte.
Wenn nur ein Teil des Mediums verwendet werden soll, entnehmen Sie die erforderliche Menge und erwärmen Sie sie vor der Verwendung auf Raumtemperatur.
Zusammensetzung
Kategorie
Bestandteile
Konzentration (mg/L)
Aminosäuren
L-Arginin HCl
126.00
L-Cystin 2 HCl
31.30
L-Glutamin
292.00
L-Histidin HClH2O
42.00
L-Isoleucin
52.00
L-Leucin
52.00
L-Lysin HCl
72.50
L-Methionin
15.00
L-Phenylalanin
32.00
L-Threonin
48.00
L-Tryptophan
10.00
L-Tyrosin 2 Na 2H2O
51.90
L-Valin
46.00
Vitamine
Cholinchlorid
1.00
Vitamine
D-Calciumpantothenat
1.00
Folsäure
1.00
myo-Inositol
2.00
Nicotinamid
1.00
Pyridoxal-HCl
1.00
Riboflavin
0.10
Thiamin HCl
1.00
Anorganische Salze
CaCl2 2H2O
265.00
Anorganische Salze
KCl
400.00
MgSO4
97.67
NaCl
6800.00
NaHCO3
2200.00
NaH2PO4
122.00
Andere Bestandteile
D-Glucose
1000.00
Andere Bestandteile
Phenolrot-Natriumsalz
11.00
Zu den wichtigsten Eigenschaften von Freeze Medium CM-1 gehören:
Breite Kompatibilität: Wirksam für eine breite Palette von Zelltypen, einschließlich Primärzellen, Stammzellen und etablierte Zelllinien.
Hohe Lebensfähigkeit: Optimiert, um die Wiederherstellung und Lebensfähigkeit von Zellen nach dem Auftauen zu maximieren und zuverlässige Versuchsergebnisse zu gewährleisten.
Fertig zum Gebrauch: Praktisch vorbereitet und sterilisiert für die sofortige Anwendung, wodurch die Vorbereitungszeit und das Kontaminationsrisiko reduziert werden.
Erhöhte Stabilität: Bewahrt eine gleichbleibende Leistung unter Standard-Kryokonservierungsbedingungen und gewährleistet reproduzierbare Ergebnisse.
Lange Haltbarkeitsdauer: CM-1 ist ein serumhaltiges, gebrauchsfertiges Kryokonservierungsmedium, das bis zu einem Jahr im Kühlschrank aufbewahrt werden kann.
Verwendung von CM-1 zum Einfrieren von Zellen
Gehen Sie wie folgt vor, um CM-1 für das Einfrieren von adhärenten und Suspensionszellen zu verwenden
Bei adhärenten Zellen waschen Sie diese und lösen sie vom Kultursubstrat. Bei Suspensionszellen fahren Sie direkt mit dem nächsten Schritt fort.
Zählen Sie die Zellen, um sicherzustellen, dass sie die richtige Konzentration haben.
Zentrifugieren Sie die Zellen, um sie zu pelletieren, und resuspendieren Sie sie dann in CM-1-Gefriermedium.
Überführen Sie die resuspendierten Zellen in Kryogefäße.
Verwenden Sie eine langsame Gefriermethode, bevor Sie die Zellen in die Langzeitlagerung überführen
Methode
Beschreibung
Schritte
❄️
Manuelles Einfrieren
Eine schrittweise Methode, bei der die Temperatur schrittweise gesenkt wird, um die Lebensfähigkeit der Zellen zu gewährleisten
1️⃣ Zellen in Gefriermedium für 40 Minuten in einen 4°C Gefrierschrank legen.
2️⃣ Für 24 Stunden in einen Gefrierschrank mit -80°C transferieren.
3️⃣ Lagern Sie die Zellen zur langfristigen Konservierung in flüssigem Stickstoff
❄️
Verwendung von Mr. Frosty
Ein praktisches Gerät, das kontrollierte Einfrierraten ohne elektrische Energie ermöglicht
1️⃣ Zellen in Kryo-Gefäßen mit Gefriermedium vorbereiten.
2️⃣ Kryovials in den Mr. Frosty-Behälter stellen.
3️⃣ Lagern Sie die Zellen bei -80°C für 24 Stunden, bevor Sie sie in flüssigen Stickstoff umfüllen
❄️
Controlled-Rate Freezer
Ein hochpräziser Gefrierschrank von Thermo Fisher oder anderen Herstellern, der für eine kontrollierte Temperaturabsenkung ausgelegt ist
1️⃣ Programmieren Sie das Gerät so, dass die Temperatur schrittweise gesenkt wird.
2️⃣ Legen Sie die vorbereiteten Zellen in den Gefrierschrank.
3️⃣ Überführen Sie die Zellen nach dem Gefrierzyklus in flüssigen Stickstoff
Lagern Sie die Kryoflaschen bei Temperaturen unter -130°C oder in flüssigem Stickstoff zur langfristigen Aufbewahrung.
Inhaltsstoffe
Enthält FBS, DMSO, Glucose, Salze
Pufferkapazität: pH = 7,2 bis 7,6
Cytion's Freeze Medium CM-1 bietet eine zuverlässige Lösung für die Kryokonservierung, die eine hohe Lebensfähigkeit und Funktionalität der Zellen nach dem Auftauen für eine Vielzahl von Forschungsanwendungen gewährleistet.
- und Hühnerleberzellen, insbesondere unter serumreduzierten Bedingungen.
Ham's F-12K (Kaighn's) Medium ist sorgfältig formuliert, um die Zellkulturbedingungen zu optimieren. Es zeichnet sich durch eine angereicherte Zusammensetzung aus, die einen erhöhten Gehalt an essenziellen Komponenten wie Aminosäuren und Natriumpyruvat sowie zusätzliche Elemente wie Putrescin, Thymidin, Hypoxanthin und Zink enthält. Diese Zusätze ermöglichen es den Forschern, das Medium mit einem Minimum an Serum oder definierten Komponenten für bestimmte Zelltypen zu ergänzen und so präzise Versuchsbedingungen zu schaffen.
Insbesondere enthält Ham's F-12K (Kaighn's) Medium keine Proteine oder Wachstumsfaktoren. Daher ist häufig eine Ergänzung mit Wachstumsfaktoren und fötalem Rinderserum (FBS) erforderlich, so dass die Forscher das Medium an die Anforderungen ihrer spezifischen Zelllinien anpassen können. Um eine optimale Leistung zu erzielen, muss die FBS-Konzentration für jede Zelllinie sorgfältig optimiert werden, um optimales Wachstum und Funktionalität zu gewährleisten.
Um den physiologischen pH-Wert aufrechtzuerhalten, verwendet das Ham's F-12K (Kaighn's) Medium ein Natriumbicarbonat-Puffersystem (2,5 g/L), das während der Kultivierung eine kontrollierte 5-10%ige CO2-Umgebung erfordert. Dadurch wird sichergestellt, dass der pH-Wert des Mediums innerhalb des idealen Bereichs für das Wachstum und die Lebensfähigkeit der Zellen bleibt
Qualitätskontrolle
pH = 7,2 +/
- 0,02 bei 20-25°C.
Jede Charge wurde auf Sterilität und Abwesenheit von Mykoplasmen und Bakterien getestet.
Wartung
Kühl aufbewahren bei +2°C bis +8°C im Dunkeln. Sowohl das Einfrieren als auch das Erwärmen auf bis zu +37°C mindern die Qualität des Produkts.
Erwärmen Sie das Medium nicht auf mehr als 37°C und verwenden Sie keine unkontrollierbaren Wärmequellen (z.B. Mikrowellengeräte).
Wenn nur ein Teil des Mediums verwendet werden soll, nehmen Sie diese Menge aus der Flasche und erwärmen Sie sie bei Raumtemperatur.
Mit Ausnahme des Basismediums ist jedes Medium 8 Wochen ab Herstellungsdatum haltbar.
Zusammensetzung
Bestandteile
mg/L
Anorganische Salze
Calciumchlorid x 2H2O
135,24
Kupfer(II)-sulfat x 5H2O
0,00
Eisen(II)-sulfat x 7H2O
0,83
Magnesiumchlorid x 6H2O
105,72
Magnesiumsulfat x 7H2O
394,49
Kaliumchlorid
283,29
Kaliumdihydrogenphosphat
58,52
Natriumchlorid
7597,20
di-Natriumhydrogenphosphatwasserfrei
115,02
Zinksulfat x 7H2O
0,14
Sonstige Bestandteile
D(+)-Glucose wasserfrei
1260,00
Hypoxanthin
4,08
DL-α-Liponsäure
0,21
Rotes Phenol
3,00
Putrescin x 2HCl
0,32
Natriumpyruvat
220,00
NaHCO3
2500,00
Thymidin
0,73
Aminosäuren
L-Alanin
17,82
L-Arginin x HCl
421,40
L-Asparagin x H2O
30,02
L-Asparaginsäure
26,62
L-Cystein x HCl x H2O
70,24
L-Glutamin
292,20
L-Glutaminsäure
29,42
Glycin
15,01
L-Histidin x HCl x H2O
41,92
L-Isoleucin
7,87
L-Leucin
26,24
L-Lysin x HCl
73,04
L-Methionin
8,95
L-Phenylalanin
9,91
L-Prolin
69,06
L-Serin
21,02
L-Threonin
23,82
L-Tryptophan
4,08
L-Tyrosin
10,87
L-Valin
23,42
Vitamine
D(+)-Biotin
0,07
D-Calciumpantothenat
0,48
Cholinchlorid
13,96
Folsäure
1,32
myo-Inositol
18,02
Nicotinamid
0,04
Pyridoxin x HCl
0,06
Riboflavin
0,04
Thiamin x HCl
0,34
Vitamin B12
1,36
Phosphatgepufferte Kochsalzlösung (PBS) ist eine weit verbreitete Pufferlösung in der biologischen und chemischen Forschung. Sie spielt eine entscheidende Rolle bei der Aufrechterhaltung des pH-Gleichgewichts und der Osmolarität während verschiedener experimenteller Verfahren, einschließlich Gewebeverarbeitung und Zellkultur. Unsere PBS-Lösung wird sorgfältig mit hochreinen Inhaltsstoffen formuliert, um Stabilität und Zuverlässigkeit bei jedem Experiment zu gewährleisten. Die Osmolarität und die Ionenkonzentration unserer PBS-Lösung sind denen des menschlichen Körpers sehr ähnlich, so dass sie isotonisch und für die meisten Zellen ungiftig ist.
Zusammensetzung unserer PBS-Lösung
Unsere PBS-Lösung ist eine pH-angepasste Mischung aus hochreinen Phosphatpuffern und Kochsalzlösungen. Bei einer 1fachen Arbeitskonzentration enthält sie:
8000 mg/L Natriumchlorid (NaCl)
200 mg/L Kaliumchlorid (KCl)
1150 mg/L Natriumphosphat dibasisch wasserfrei (Na2HPO4)
200 mg/L Kaliumphosphat einbasig wasserfrei (KH2PO4)
Diese Zusammensetzung gewährleistet ein optimales pH
- und Ionengleichgewicht und eignet sich für eine breite Palette biologischer Anwendungen.
Anwendungen unserer PBS-Lösung
Unsere PBS-Lösung ist ideal für verschiedene Anwendungen in der biologischen Forschung. Aufgrund ihrer isotonischen und ungiftigen Eigenschaften eignet sie sich für die Verdünnung von Substanzen und die Spülung von Zellbehältern. PBS-Lösungen, die EDTA enthalten, sind wirksam, um anhaftende und verklumpte Zellen abzulösen. Zweiwertige Metalle wie Zink sollten jedoch nicht zu PBS hinzugefügt werden, da dies zu Ausfällungen führen kann. In solchen Fällen werden Good's Puffer empfohlen. Außerdem ist unsere PBS-Lösung eine akzeptable Alternative zu viralen Transportmedien für den Transport und die Lagerung von RNA-Viren, einschließlich SARS-CoV-2.
Qualitätskontrolle
Steril gefiltert
Lagerung und Haltbarkeit
Vor Licht geschützt bei +2°C bis +25°C lagern.
Nach dem Öffnen bei 2°C bis 25°C lagern und innerhalb von 24 Monaten verbrauchen.
Versandbedingungen
Umgebungstemperatur
Pflege
Gekühlt bei +2°C bis +8°C im Dunkeln aufbewahren. Vermeiden Sie Einfrieren und häufiges Erwärmen auf +37°C, da dies die Produktqualität beeinträchtigt.
Erwärmen Sie das Medium nicht über 37°C und verwenden Sie keine unkontrollierten Wärmequellen wie Mikrowellengeräte.
Wenn nur ein Teil des Mediums verwendet werden soll, entnehmen Sie die erforderliche Menge und erwärmen Sie sie vor der Verwendung auf Raumtemperatur.
Zusammensetzung
Kategorie
Bestandteile
Konzentration (mg/L)
Salze
Kaliumchlorid
200
Kaliumphosphat monobasisch wasserfrei
200
Natriumchlorid
8000
Natriumphosphat zweibasisch wasserfrei
1150
Ursprünglich für das Wachstum menschlicher Leukämiezellen in Suspensions
- und Monolayerkulturen konzipiert, hat sich RPMI 1640 Medium durch Modifikationen von Forschern und kommerziellen Anbietern weiterentwickelt und ist heute für eine Vielzahl von Säugetierzellen geeignet. Es ist außergewöhnlich kompatibel mit Zelllinien wie HeLa, Jurkat, MCF-7, PC12, PBMC, Astrozyten und Karzinomen.
RPMI 1640 Medium hebt sich von anderen Zellkulturmedien durch seine einzigartige Zusammensetzung ab. Es enthält eine erhebliche Menge an Phosphat, Aminosäuren und Vitaminen. Insbesondere enthält es Biotin, Vitamin B12 und PABA, die in Eagle's Minimal Essential Medium oder Dulbecco's Modified Eagle Medium nicht vorhanden sind. Außerdem weist RPMI 1640 Medium deutlich erhöhte Konzentrationen der Vitamine Inositol und Cholin auf. Es enthält jedoch keine Proteine, Lipide oder Wachstumsfaktoren. Daher ist in der Regel eine Ergänzung mit 10 % fötalem Rinderserum (FBS) erforderlich, um optimale Bedingungen für das Zellwachstum zu schaffen.
Das Puffersystem von RPMI 1640 Medium basiert auf Natriumbicarbonat und erfordert eine 5-10%ige CO2-Umgebung, um einen physiologisch angemessenen pH-Wert zu erhalten. Durch die Zugabe des Reduktionsmittels Glutathion unterscheidet sich dieses Medium weiter von anderen.
Qualitätskontrolle
Steril gefiltert
Lagerung und Haltbarkeit
Vor Licht geschützt bei +2°C bis +8°C lagern.
Nach dem Öffnen bei 4°C lagern und innerhalb von 6-8 Wochen aufbrauchen.
Versandbedingungen
Umgebungstemperatur
Pflege
Gekühlt bei +2°C bis +8°C im Dunkeln aufbewahren. Vermeiden Sie Einfrieren und häufiges Erwärmen auf +37°C, da dies die Produktqualität beeinträchtigt.
Erwärmen Sie das Medium nicht über 37°C und verwenden Sie keine unkontrollierten Wärmequellen wie Mikrowellengeräte.
Wenn nur ein Teil des Mediums verwendet werden soll, entnehmen Sie die erforderliche Menge und erwärmen Sie sie vor der Verwendung auf Raumtemperatur.
Zusammensetzung
Kategorie
Bestandteile
Konzentration (mg/L)
Aminosäuren
Glycin
10.00
L-Alanyl-L-Glutamin
434.40
L-Arginin
200.00
L-AsparaginH2O
56.82
L-Asparaginsäure
20.00
L-Cystin 2HCl
65.20
L-Glutaminsäure
20.00
L-Histidin HClH2O
20.27
L-Hydroxy-L-Prolin
20.00
L-Isoleucin
50.00
L-Leucin
50.00
L-Lysin HCl
40.00
L-Methionin
15.00
L-Phenylalanin
15.00
L-Prolin
20.00
L-Serin
30.00
L-Threonin
20.00
L-Tryptophan
5.00
L-Tyrosin 2Na 2H2O
28.83
L-Valin
20.00
Vitamine
p-Amino-Benzoesäure
1.00
D-Biotin
0.20
Cholinchlorid
3.00
D-Calciumpantothenat
0.25
Folsäure
1.00
myo-Inositol
35.00
Nicotinamid
1.00
Pyridoxin HCl
1.00
Riboflavin
0.20
Thiamin HCl
1.00
Vitamin B12
0.005
Anorganische Salze
Ca(NO3)2 4H2O
100.00
KCl
400.00
MgSO4 7H2O
100.00
NaCl
6000.00
NaHCO3
2000.00
Na2HPO4
800.00
Andere Bestandteile
D-Glucose
2000.00
L-Glutathion Reduziert
1.00
Phenolrot Natriumsalz
5.30
Diese einzigartige Formulierung kombiniert Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) und Ham's F-12 (Ham's Nutrient Mixture F-12) in einem präzisen 1:1-Verhältnis. Durch den Zusatz von L-Glutamin wird die Zusammensetzung weiter verbessert.
DMEM, das von Eagle's Minimal Essential Medium (EMEM) abgeleitet ist, bietet im Vergleich zu seinem Vorgänger eine höhere Konzentration an Aminosäuren und Vitaminen. Im Gegensatz dazu basiert Ham's F-12 auf dem Medium Ham's F-10 und bietet eine ergänzende Reihe von essentiellen Komponenten.
Um ein optimales Zellwachstum zu unterstützen, ist es üblich, DMEM:Ham's F12 mit FBS in einer typischen Konzentration von 5-10 % zu ergänzen. Dieser Zusatz ist notwendig, da dem Medium Wachstumshormone, Lipide und Proteine fehlen, die für die zelluläre Entwicklung entscheidend sind.
DMEM:Ham's F12 enthält ein pH-Puffersystem und wird häufig mit Phenolrot, einem pH-Indikator, ergänzt. Zellen, die in DMEM:Ham's F12 oder einem anderen Medium mit Bikarbonatpuffer kultiviert werden, benötigen eine kontrollierte CO2-Umgebung von 5-10%, um einen angemessenen pH-Wert zu erhalten.
Qualitätskontrolle
Steril gefiltert
Lagerung und Haltbarkeit
Vor Licht geschützt bei +2°C bis +8°C lagern.
Nach dem Öffnen bei 4°C lagern und innerhalb von 6-8 Wochen aufbrauchen.
Versandbedingungen
Umgebungstemperatur
Pflege
Gekühlt bei +2°C bis +8°C im Dunkeln aufbewahren. Vermeiden Sie Einfrieren und häufiges Erwärmen auf +37°C, da dies die Produktqualität beeinträchtigt.
Erwärmen Sie das Medium nicht über 37°C und verwenden Sie keine unkontrollierten Wärmequellen wie Mikrowellengeräte.
Wenn nur ein Teil des Mediums verwendet werden soll, entnehmen Sie die erforderliche Menge und erwärmen Sie sie vor der Verwendung auf Raumtemperatur.
Zusammensetzung
Kategorie
Bestandteile
Konzentration (mg/L)
Aminosäuren
Glycin
18.75
L-Alanin
4.45
L-Arginin HCl
147.50
L-Asparagin H₂O
7.50
L-Asparaginsäure
6.65
L-Cystein HCl H₂O
17.56
L-Cystin 2 HCl
31.29
L-Glutaminsäure
7.35
L-Glutamin
365.00
L-Histidin HCl H₂O
31.48
L-Isoleucin
54.47
L-Leucin
59.05
L-Lysin HCl
91.25
L-Methionin
17.24
L-Phenylalanin
35.48
L-Prolin
17.25
L-Serin
26.25
L-Threonin
53.45
L-Tryptophan
9.02
L-Tyrosin-Natriumsalz
48.10
L-Valin
52.85
Vitamine
D-Biotin
0.0035
Cholinchlorid
8.98
D-Calciumpantothenat
2.24
Folsäure
2.66
myo-Inositol
12.60
Nicotinamid
2.02
Pyridoxin HCl
0.031
Pyridoxal HCl
2.00
Riboflavin
0.219
Thiamin-HCl
2.17
Vitamin B12
0.68
Anorganische Salze
CaCl₂ 2 H₂O
154.50
CuSO₄ 5 H₂O
0.0013
Fe(NO₃)₃ 9 H₂O
0.05
FeSO₄ 7 H₂O
0.417
KCl
311.80
MgCl₂ 6 H₂O
61.20
MgSO₄
48.84
NaCl
6996.00
NaHCO₃
1200.00
Na₂HPO₄
71.02
NaH₂PO₄
54.30
ZnSO₄ 7 H₂O
0.432
Andere Bestandteile
D-Glucose
3151.00
Hypoxanthin
2.40
HEPES
3574.50
Linolsäure
0.042
Liponsäure
0.105
Phenolrot Natriumsalz
8.63
Putrescin 2 HCl
0.081
Natriumpyruvat
55.00
Thymidin
0.365
Eine herausragende Anwendung von McCoy's 5A Medium ist die Kultivierung menschlicher Kolon-Karzinom-Zelllinien. Insbesondere wurde es bei der Untersuchung des Leucin-reichen Repeat-enthaltenden G-Protein-gekoppelten Rezeptors (LGR5) und seiner Rolle bei der Metastasierung von Dickdarmkrebs eingesetzt. Dieses Medium hat sich bei der Kultivierung verschiedener Kolonkarzinom-Zelllinien wie HCT116, RKO, FET, CBS, HCT116b und TENN bewährt und ermöglicht es den Forschern, die der Metastasierung von Kolonkarzinomen zugrunde liegenden Mechanismen genauer zu erforschen.
Neben seiner Anwendung in der Krebsforschung hat sich McCoy's 5A Medium auch bei der Untersuchung von Osteoblasten als unverzichtbar erwiesen. Forscher, die die Ionenreaktivität von kalziumarmem Hydroxylapatit in Standard-Zellkulturmedien untersuchen, haben dieses Medium zur Kultivierung von Osteoblasten verwendet. Diese Anwendung hat zu einem besseren Verständnis der Wechselwirkungen zwischen Osteoblasten und kalziumarmem Hydroxylapatit geführt und zu Fortschritten auf dem Gebiet der Knochenforschung beigetragen.
McCoy's 5A Medium wurde sorgfältig formuliert, indem die im Basalmedium Eagle enthaltenen Aminosäuren modifiziert wurden, um Lebertumorzellen optimal zu unterstützen. Dank dieser angereicherten Formulierung eignet sich das Medium für eine Vielzahl etablierter Zelllinien sowie für Primärzellen, was seine Vielseitigkeit und Anwendbarkeit in verschiedenen Forschungsbereichen weiter erhöht.
Darüber hinaus geht die biochemische und physiologische Wirkung von McCoy's 5A Medium über Lebertumorzellen hinaus. Es wurde erfolgreich zur Unterstützung des Wachstums in Primärkulturen von Knochenmark, Haut, Zahnfleisch, Niere, Omentum, Nebenniere, Lunge, Milz, Rattenembryo und anderen Zelltypen eingesetzt. Diese breite Palette von Anwendungen beweist den großen Nutzen von McCoy's 5A Medium bei der Unterstützung des Wachstums und der Erhaltung verschiedener Zelltypen für umfassende biologische Forschung.
Formulierung
Dieses McCoy's 5A Medium (modifiziert) enthält 3,0 g/L Glucose, stabiles Glutamin, 2,0 mM Natriumpyruvat und 2,2 g/L NaHCO3.
Qualitätskontrolle
pH = 7,2 +/
- 0,02 bei 20-25°C.
Jede Charge wurde auf Sterilität und Abwesenheit von Mykoplasmen und Bakterien getestet.
Wartung
Kühl aufbewahren bei +2°C bis +8°C im Dunkeln. Einfrieren und Erwärmen bis zu +37° C mindern die Qualität des Produkts.
Erwärmen Sie das Medium nicht auf mehr als 37° C und verwenden Sie keine unkontrollierbaren Wärmequellen (z.B. Mikrowellengeräte).
Wenn nur ein Teil des Mediums verwendet werden soll, nehmen Sie diese Menge aus der Flasche und erwärmen Sie sie bei Raumtemperatur.
Die Haltbarkeit eines jeden Mediums mit Ausnahme des Basismediums beträgt 8 Wochen ab Herstellungsdatum.
Zusammensetzung
Bestandteile
mg/L
Anorganische Salze
Calciumchlorid x 2H2O
132,46
Magnesiumsulfat x 7H2O
200,00
Kaliumchlorid
400,00
Natriumchlorid
6,460.00
Natriumdihydrogenphosphat x H2O
580,00
Sonstige Bestandteile
D(+)-Galaktose wasserfrei
3,000.00
Glutathion (red.)
0,50
Bacto-Pepton
600,00
Phenolrot
10,00
Aminosäuren
L-Alanin
13,36
L-Arginin x HCl
42,10
L-Asparagin x H2O
45,00
L-Asparaginsäure
19,97
L-Cystein
24,24
L-Glutamin stabil
326,61
L-Glutaminsäure
22,10
Glycin
7,50
L-Histidin x HCl x H2O
20,76
L-Hydroxyprolin
19,70
L-Isoleucin
39,36
L-Leucin
39,36
L-Lysin x HCl
36,50
L-Methionin
14,90
L-Phenylalanin
16,50
L-Prolin
17,30
L-Serin
26,30
L-Threonin
17,90
L-Tryptophan
3,10
L-Tyrosin
18,10
L-Valin
17,60
Vitamine
p-Aminobenzoesäure
1,00
Ascorbinsäure
0,50
D(+)-Biotin
0,20
D-Calciumpantothenat
0,20
Cholinchlorid
5,00
Medium 199 bietet eine Reihe von Anwendungsmöglichkeiten in diesem Bereich. Es kann den Kumulus-Oozyten-Komplex (COC) effektiv erhalten und die In-vitro-Reifung von Eizellen unterstützen. Außerdem wird es bei der Spülung von Aspirationslinien während der Eizellentnahme bei deutschen Holstein-Kühen eingesetzt. Darüber hinaus ist Medium 199 ein hervorragendes Medium für die Kultur von Herzendothelzellen von Ratten. Diese Anwendungen zeigen die Vielseitigkeit und Anpassungsfähigkeit von Medium 199 an verschiedene experimentelle Anforderungen.
Geschichte
Die Entwicklung von Medium 199 in den 1950er Jahren stellte einen bedeutenden Fortschritt bei den Gewebekulturmedien dar. Vor seiner Einführung stützten sich viele Kulturmedien auf Produkte tierischen Ursprungs und Gewebeextrakte. Morgan und Kollegen revolutionierten jedoch das Feld, indem sie eine vollständig definierte Nährstoffquelle für Zellkulturen formulierten. Durch ihre Experimente mit verschiedenen Kombinationen von Vitaminen, Aminosäuren und anderen Faktoren entdeckten sie die außergewöhnlichen wachstumsfördernden Eigenschaften von Medium 199.
Qualitätskontrolle
pH = 7,2 +/
- 0,02 bei 20-25°C.
Jede Charge wurde auf Sterilität und Abwesenheit von Mykoplasmen und Bakterien getestet.
Wartung
Kühl aufbewahren bei +2°C bis +8°C im Dunkeln. Einfrieren und Erwärmen bis zu +37° C mindern die Qualität des Produkts.
Erwärmen Sie das Medium nicht auf mehr als 37° C und verwenden Sie keine unkontrollierbaren Wärmequellen (z.B. Mikrowellengeräte).
Wenn nur ein Teil des Mediums verwendet werden soll, nehmen Sie diese Menge aus der Flasche und erwärmen Sie sie bei Raumtemperatur.
Die Haltbarkeit eines jeden Mediums mit Ausnahme des Basismediums beträgt 8 Wochen ab dem Herstellungsdatum.
Zusammensetzung
Bestandteile
mg/L
Anorganische Salze
Calciumchlorid x 2H2O
264,92
Eisen(III)-nitrat x 9H2O
0,72
Magnesium-Sulfat
97,67
Kaliumchlorid
400,00
Natriumacetat x 3H2O
82,95
Natriumchlorid
6,800.00
Natriumdihydrogenphosphat x H2O
140,00
Andere Komponenten
Adenin-Sulfat
10,00
AMP
0,20
ATP
1,00
Cholesterin
0,20
2'-Deoxyribose
0,50
D(+)-Glucose wasserfrei
1,000.00
Glutathion (red.)
0,05
Guanin x HCl
0,30
Hypoxanthin
0,30
Phenol rot
10,00
D-Ribose
0,50
Thymin
0,30
Tween 80
4,90
Uracil
0,30
Xanthin
0,30
NaHCO3
2,200.00
Aminosäuren
L-Alanin
25,00
L-Arginin x HCl
70,00
L-Asparaginsäure
30,00
L-Cystein x HCl x H2O
0,10
L-Cystein
20,00
L-Glutamin stabil
149,00
L-Glutaminsäure
67,00
Glycin
50,00
L-Histidin x HCl x H2O
21,88
L-Hydroxyprolin
10,00
L-Isoleucin
20,00
L-Leucin
60,00
L-Lysin x HCl
70,00
L-Methionin
15,00
L-Phenylalanin
25,00
L-Prolin
40,00
L-Serin
25,00
L-Threonin
30,00
L-Tryptophan
10,00
L-Tyrosin
40,00
L-Valin
25,00
Vitamine
4-Aminobenzoesäure
0,05
Ascorbinsäure
0,05
D(+)-Biotin
0,01
Calciferol
0,10
D-Calciumpantothenat
0,01
Cholinchlorid
0,50
Folsäure
0,01
myo-Inositol
0,05
Menadion
0,01
Nicotinsäure
0.025
Nicotinamid
0.025
Pyridoxal x HCl
0.025
Pyridoxol x HCl
0.025
Riboflavin
0,01
DL-α-Tocopherolphosphat-Dinatriumsalz
0,01
Thiamin x HCl
0,01
Vitamin A-Acetat
0,14
IMDM eignet sich gut für schnell proliferierende Zellkulturen mit hoher Dichte, einschließlich Jurkat-, COS-7
- und Makrophagen-Zellen. Die verschiedenen Modifikationen von IMDM, die für eine Reihe von Zellkulturanwendungen zur Verfügung stehen, können mit dem Media Selector Tool gefunden werden. Flüssigmedien liefern wichtige Nährstoffe für alle Zellkulturanwendungen. Jedes unserer hochwertigen Zellkulturmedien wird nach der ursprünglich veröffentlichten Formel oder nach Modifikationen hergestellt, die für eine gleichbleibende Leistung und Stabilität des Kulturmediums erforderlich sind.
IMDM vs. DMEM
IMDM enthält Kaliumnitrat anstelle von Eisen(III)-Nitrat sowie HEPES und Natriumpyruvat. Die zusätzlichen Komponenten in IMDM machen es geeigneter für spezielle Zelltypen und spezifische Anwendungen als DMEM.
IMDM vs. RPMI
IMDM und RPMI haben unterschiedliche Formulierungen, die für die PMA/Ionomycin-Stimulation relevant sein können. Ein wesentlicher Unterschied ist die Ca2+-Konzentration. Während RPMI 0,42 mM Ca2+ enthält, enthält IMDM 1,49 mM.
Qualitätskontrolle
pH = 7,2 +/
- 0,02 bei 20-25°C.
Jede Charge wurde auf Sterilität und Abwesenheit von Mykoplasmen und Bakterien getestet.
Wartung
Gekühlt bei +2°C bis +8°C im Dunkeln aufbewahren. Einfrieren und Erwärmen bis zu +37° C mindern die Qualität des Produkts.
Erwärmen Sie das Medium nicht auf mehr als 37° C und verwenden Sie keine unkontrollierbaren Wärmequellen (z.B. Mikrowellengeräte).
Wenn nur ein Teil des Mediums verwendet werden soll, nehmen Sie diese Menge aus der Flasche und erwärmen Sie sie bei Raumtemperatur.
Die Haltbarkeit eines jeden Mediums mit Ausnahme des Basismediums beträgt 8 Wochen ab dem Herstellungsdatum.
Zusammensetzung
Bestandteile
mg/L
Anorganische Salze
Calciumchlorid x 2 H2O
219,00
Kaliumchlorid
330,00
Kaliumnitrat
0.076
Magnesiumsulfat, wasserfrei
97,73
Natriumchlorid
4,505.00
Natriumdihydrogenphosphat wasserfrei
109,00
Natriumselenit
0,02
Sonstige Bestandteile
D(+)-Glucose wasserfrei
4,500.00
HEPES
5,958.00
Natriumpyruvat
110,00
Phenolrot
15,00
Aminosäuren
L-Alanin
25,00
L-Arginin x HCl
84,00
L-Asparagin x H2O
25,00
L-Asparaginsäure
30,00
L-Cystin x 2HCl
91,24
L-Glutamin
584,00
L-Glutaminsäure
75,00
Glycin
30,00
L-Histidin x HCl x H2O
42,00
L-Isoleucin
104,80
L-Leucin
104,80
L-Lysin x HCl
146,20
L-Methionin
30,00
L-Phenylalanin
66,00
L-Prolin
40,00
L-Serin
42,00
L-Threonin
95,20
L-Tryptophan
16,00
L-Tyrosin x 2Na
104,20
L-Valin
93,60
Vitamine
D(+)-Biotin
0.013
D-Calciumpantothenat
4,00
Cholinchlorid
4,00
Folsäure
4,00
myo-Inositol
7,20
Einer seiner bemerkenswerten Vorteile ist die Fähigkeit, das Zellwachstum zu unterstützen, ohne dass eine Supplementierung mit Serum erforderlich ist. Dadurch werden potenzielle Interferenzen durch Serumkomponenten vermieden und konsistente und zuverlässige Versuchsergebnisse gewährleistet. Durch die Bereitstellung einer serumfreien Kulturumgebung bietet Ham's F-12 Medium den Forschern eine größere Kontrolle über ihre Untersuchungen.
Ein weiteres wichtiges Merkmal von Ham's F-12 Medium ist seine Eignung für die Ausplattierung einzelner Zellen. Dies macht es zu einer hervorragenden Wahl für eine Vielzahl von Zelllinien, einschließlich CHO-Zellen, Lungenzellen und Maus-L-Zellen. Die optimierte Nährstoffzusammensetzung des Mediums erleichtert die effiziente Anheftung und das Wachstum einzelner Zellen und ermöglicht die Etablierung homogener Zellkulturen mit verbesserter Reproduzierbarkeit.
Darüber hinaus hat sich Ham's F-12 Medium als das bevorzugte Medium für den Clonal Toxicity Assay (CTA) durchgesetzt. Dieser Assay spielt eine entscheidende Rolle bei der Bewertung der zytotoxischen Wirkung von Substanzen auf Zellen. Durch die Verwendung von Ham's F-12 Medium im CTA können Forscher die Auswirkungen verschiedener Substanzen oder Behandlungen auf einzelne Zellen genau bewerten und so wertvolle Erkenntnisse über toxikologische Profile gewinnen.
Qualitätskontrolle
pH = 7,2 +/
- 0,02 bei 20-25°C.
Jede Charge wurde auf Sterilität und Abwesenheit von Mykoplasmen und Bakterien getestet.
Wartung
Kühl aufbewahren bei +2°C bis +8°C im Dunkeln. Einfrieren und Erwärmen bis zu +37° C mindern die Qualität des Produkts.
Erwärmen Sie das Medium nicht auf mehr als 37° C und verwenden Sie keine unkontrollierbaren Wärmequellen (z.B. Mikrowellengeräte).
Wenn nur ein Teil des Mediums verwendet werden soll, nehmen Sie diese Menge aus der Flasche und erwärmen Sie sie bei Raumtemperatur.
Die Haltbarkeit eines jeden Mediums mit Ausnahme des Basismediums beträgt 8 Wochen ab dem Herstellungsdatum.
Zusammensetzung
Bestandteile
mg/L
Anorganische Salze
Calciumchlorid x 2H2O
44,00
Kupfer(II)-sulfat x 5H2O
0,00
Eisen(II)-sulfat x 7H2O
0,83
Magnesiumchlorid x 6H2O
122,00
Kaliumchlorid
223,65
Natriumchlorid
7599,00
di-Natriumhydrogenphosphatwasserfrei
142,04
Zinksulfat x 7H2O
0,86
Sonstige Bestandteile
D(+)-Glucose wasserfrei
1801,60
Hypoxanthin
4,08
Linolsäure
0,08
DL-α-Liponsäure
0,21
Rotes Phenol
1,20
Putrescin x 2HCl
0,16
Natriumpyruvat
110,00
Thymidin
0,73
NaHCO3
1176,00
Aminosäuren
L-Alanin
8,91
L-Arginin x HCl
210,70
L-Asparagin x H2O
15,01
L-Asparaginsäure
13,31
L-Cystein x HCl x H2O
35,12
L-Alanyl-L-Glutamin
217,30
L-Glutaminsäure
14,71
Glycin
7,51
L-Histidin x HCl x H2O
20,96
L-Isoleucin
3,94
L-Leucin
13,12
L-Lysin x HCl
36,54
L-Methionin
4,48
L-Phenylalanin
4,96
L-Prolin
34,53
L-Serin
10,51
L-Threonin
11,91
L-Tryptophan
2,04
L-Tyrosin
5,44
L-Valin
11,71
Vitamine
D(+)-Biotin
0,01
D-Calciumpantothenat
0,24
Cholinchlorid
13,96
Folsäure
1,32
myo-Inositol
18,02
Nicotinamid
0,04
Pyridoxin x HCl
0,06
Riboflavin
0,04
Thiamin x HCl
0,34
Vitamin B12
1,36
Entdecken Sie das fortschrittliche NCI-H295R-Zellwachstumsmedium, eine fachmännisch hergestellte Nährlösung, die speziell zur Förderung des Wachstums und der Erhaltung von Säugetierzelllinien, einschließlich der spezialisierten NCI-H295R-Zellen, entwickelt wurde. Dieses Medium zeichnet sich durch seine einzigartige Mischung aus Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) und Ham's F-12 (Nährstoffmischung F-12) in einem präzisen 1:1-Verhältnis aus, die mit wichtigen Zusätzen angereichert ist, um die komplexen Bedürfnisse der Zellkultur zu erfüllen.
Verbesserte Formulierung für überlegene Zellkulturleistung
Ergänztes Basismedium: Das Basismedium ist bereits reichhaltig und kombiniert die hohen Aminosäure
- und Vitaminkonzentrationen von DMEM mit den verschiedenen Nährstoffen von Ham's F-12. Zu dieser wirksamen Mischung haben wir 5% fötales Rinderserum (FBS) hinzugefügt, das wichtige Wachstumsfaktoren, Hormone und Proteine liefert.
Maßgeschneiderte Zusatzstoffe: Neben FBS ist dieses Medium mit wichtigen Zusätzen wie Insulin, Transferrin, Rinderserumalbumin, Selensäure und Linolsäure angereichert. Diese Zusätze sind auf spezifische zelluläre Anforderungen abgestimmt und fördern das Zellwachstum, die Stoffwechselfunktion und die allgemeine Gesundheit.
L-Glutamin-Boost: Das Vorhandensein von L-Glutamin verstärkt die Wirksamkeit des Mediums, indem es wesentliche Stoffwechselprozesse unterstützt und eine robuste Zellproliferation fördert.
Optimiert für die Zellkultur
pH-kontrollierte Umgebung: Das Medium enthält ein Bikarbonat-Puffersystem und einen Phenolrot-Indikator und gewährleistet so eine stabile pH-Umgebung. Es ist für eine 5%-ige CO2-Atmosphäre optimiert und ermöglicht so eine präzise pH-Überwachung und -Einstellung.
Qualität und Reinheit: Jede Charge des Basismediums wird strengen Tests auf Sterilität, Mykoplasmen und Bakterien unterzogen, um die Integrität des Mediums zu gewährleisten. Mit einem pH-erhaltenden Medium können Sie auf die gleichbleibende Qualität und Leistung dieses Mediums vertrauen.
Handhabung und Lagerung
Bewahren Sie die Qualität des Mediums auf, indem Sie es gekühlt bei +2°C bis +8°C und vor Licht geschützt lagern. Vermeiden Sie extreme Bedingungen wie Einfrieren oder Überhitzung, um die Wirksamkeit des Mediums zu erhalten. Bei teilweiser Verwendung erwärmen Sie die benötigte Menge vorsichtig bei Raumtemperatur, um sicherzustellen, dass das Medium in den richtigen Zustand gebracht wird, ohne seine Bestandteile zu beeinträchtigen.
Haltbarkeitsdauer
Mit einer Haltbarkeit von 8 Wochen ab Herstellungsdatum ist das NCI-H295R Zellwachstumsmedium eine verlässliche Wahl für Ihre Zellkulturbedürfnisse und sichert die Vitalität und Produktivität Ihrer Forschung.
Was DMEM von anderen Medien unterscheidet, ist seine einzigartige Zusammensetzung. Es enthält eine beeindruckende Vervierfachung der Aminosäure
- und Vitaminkonzentration im Vergleich zum ursprünglichen Eagle's Minimal Essential Medium. Ursprünglich mit niedrigem Glukosegehalt (1 g/L) und Natriumpyruvat entwickelt, wird DMEM häufig mit höherem Glukosegehalt verwendet, entweder mit oder ohne Natriumpyruvat. DMEM enthält keine Proteine, Lipide oder Wachstumsfaktoren, so dass eine Supplementierung erforderlich ist. Um ein optimales Wachstum zu erreichen, wird DMEM häufig mit 10 % fötalem Rinderserum (FBS) ergänzt. Außerdem enthält DMEM ein Natriumbicarbonat-Puffersystem, das zur Aufrechterhaltung eines physiologischen pH-Werts eine 5-10%ige CO2-Umgebung erfordert.
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) ist ein hoch angesehenes Medium für die Zell
- und Gewebekultur, das den Wachstumsanforderungen verschiedener adhärenter Zellphänotypen gerecht wird. Es übertrifft das ursprüngliche Eagle's Medium, das in den 1950er Jahren für die Kultivierung von Hühnerzellen entwickelt wurde, durch eine verbesserte Zusatzformulierung, die als Dulbecco's Modifikation bekannt ist. Diese Modifikation erhöht den Gehalt an ausgewählten Aminosäuren und Vitaminen im Vergleich zum Originalmedium um das bis zu Vierfache.
Im Bereich der Zellkultur spielt DMEM eine wichtige Rolle als Wachstumsmedium für verschiedene Zelltypen, darunter Primärzellen, Stammzellen und transformierte Zellen. Forscher setzen die modifizierte Version von DMEM auch für eine Vielzahl von Forschungsanwendungen ein, z. B. in der Arzneimittelforschung, im Tissue Engineering und bei der Untersuchung von Zellsignalwegen.
Qualitätskontrolle
Steril gefiltert
Lagerung und Haltbarkeit
Vor Licht geschützt bei +2°C bis +8°C lagern.
Nach dem Öffnen bei 4°C lagern und innerhalb von 6-8 Wochen verbrauchen.
Versandbedingungen
Umgebungstemperatur
Pflege
Gekühlt bei +2°C bis +8°C im Dunkeln aufbewahren. Vermeiden Sie Einfrieren und häufiges Erwärmen auf +37°C, da dies die Produktqualität beeinträchtigt.
Erwärmen Sie das Medium nicht über 37°C und verwenden Sie keine unkontrollierten Wärmequellen wie Mikrowellengeräte.
Wenn nur ein Teil des Mediums verwendet werden soll, entnehmen Sie die erforderliche Menge und erwärmen Sie sie vor der Verwendung auf Raumtemperatur.
Zusammensetzung
Kategorie
Bestandteile
Konzentration (mg/L)
Aminosäuren
Glycin
30.00
L-Arginin HCl
84.00
L-Cystin 2 HCl
62.57
L-Glutamin
584.00
L-Histidin HClH2O
42.00
L-Isoleucin
105.00
L-Leucin
105.00
L-Lysin HCl
146.00
L-Methionin
30.00
L-Phenylalanin
66.00
L-Serin
42.00
L-Threonin
95.00
L-Tryptophan
16.00
L-Tyrosin 2 Na 2H2O
103.79
L-Valin
94.00
Vitamine
Cholinchlorid
4.00
D-Calciumpantothenat
4.00
Folsäure
4.00
myo-Inositol
7.20
Nicotinamid
4.00
Pyridoxal HCl
4.00
Riboflavin
0.40
Thiamin HCl
4.00
Anorganische Salze
CaCl2 2H2O
265.00
Fe(NO3)3 9H2O
0.10
KCl
400.00
MgSO4 7H2O
200.10
NaCl
6400.00
NaHCO3
3700.00
NaH2PO4 2H2O
141.73
Sonstige Bestandteile
D-Glucose
4500.00
Phenolrot Natriumsalz
15.90
Natriumpyruvat
110.00
Zellkulturmedien: Ein Überblick
Im Bereich der Biowissenschaften ist eine der wichtigsten Methoden die Zellkultur. Mit dem Begriff "Zellkultur" ist die Entnahme von Zellen, Geweben oder Organen aus einem Tier oder einer Pflanze und die anschließende Implantation dieser Zellen, Gewebe oder Organe in eine künstliche Umgebung gemeint, die ihr Überleben und/oder Wachstum begünstigt Die grundlegenden Voraussetzungen für eine optimale Zellentwicklung sind eine kontrollierte Temperatur, ein Substrat für die Zellanhaftung, ein geeignetes Wachstumsmedium und ein Inkubator, der den optimalen pH-Wert und die optimale Osmolalität aufrechterhält. Die Zellen müssen diese Bedingungen vorfinden, damit sie ihr volles Potenzial entfalten können.
Die Auswahl eines geeigneten Wachstumsmediums für die In-vitro-Kultivierung ist der kritischste und zugleich wichtigste Schritt in der Zellkultur. Ein Wachstumsmedium, auch Kulturmedium genannt, ist eine Flüssigkeit oder ein Gel, das die Entwicklung von Organismen auf mikroskopischer, zellulärer oder pflanzenähnlicher Ebene fördert. Das Medium, das für die Kultivierung von Zellen verwendet wird, enthält häufig eine ausreichende Menge an Energie und Substanzen, die den Zellzyklus steuern. Zu den Hauptbestandteilen eines Nährbodens gehören Aminosäuren, Vitamine, anorganische Salze, Glukose und Serum. Das Serum wird dem Medium zugesetzt, weil es als Quelle für Wachstumsfaktoren, Hormone und Bindungsfaktoren dient. Das Medium liefert nicht nur Nährstoffe, sondern trägt auch zur Aufrechterhaltung des pH-Werts und der Osmolalität bei.
In der Zellkultur verwendete Medientypen
Sowohl menschliche als auch tierische Zellen können entweder in einem künstlichen oder synthetischen Medium gezüchtet werden oder in einem völlig natürlichen Medium, das mit natürlichen Elementen angereichert ist. Im Folgenden geben wir Ihnen einen Überblick über die verschiedenen derzeit verfügbaren Medientypen.
Natürliche Medien
In natürlichen Medien sind nur biologische Flüssigkeiten zu finden, die in ihrem natürlichen Zustand vorliegen. Natürliche Medien sind sehr hilfreich und einfach für die Kultivierung einer Vielzahl von tierischen Zelltypen. Die mangelnde Kenntnis der genauen Bestandteile, aus denen natürliche Medien bestehen, ist der Hauptgrund für die geringe Wiederholbarkeit der mit natürlichen Medien erzielten Ergebnisse.
Künstliche Medien
Bei der Herstellung künstlicher oder synthetischer Medien werden Nährstoffe (sowohl organische als auch anorganische), Serumproteine, Kohlenhydrate, Cofaktoren, Vitamine und Salze sowie O2 und CO2-Gasphasen hinzugefügt [1].
Es wurden verschiedene Arten von künstlichen Medien entwickelt, um eine oder mehrere der folgenden Funktionen zu erfüllen: 1) Sofortiges Überleben (eine ausgewogene Salzlösung mit einem genauen pH-Wert und osmotischem Druck). 2) Längeres Überleben (eine ausgewogene Salzlösung, die mit verschiedenen Formulierungen von organischen Chemikalien und/oder Serum ergänzt wird). 3) Unbegrenzte Entwicklung. 4) Spezialisierte Funktionen.
Es gibt vier verschiedene Klassifizierungen für künstliche Medien:
Serumhaltige Medien
Die häufigste Art von Zusatzstoffen, die in Nährmedien für tierische Zellen verwendet werden, ist fötales Rinderserum. Es wird dem Nährmedium als kostengünstige Ergänzung zugesetzt, um bestmögliche Wachstumsbedingungen zu erreichen. Das Serum fungiert nicht nur als Transporter oder Chelator für instabile oder wasserunlösliche Nährstoffe, Hormone und Wachstumsfaktoren, Proteaseinhibitoren und andere Substanzen, sondern bindet und neutralisiert auch schädliche Moleküle.
Serumfreies Medium
Das Vorhandensein von Serum in den Medien hat eine Reihe von Nachteilen und kann in der immunologischen Forschung zu erheblichen Interpretationsfehlern führen [2, 3]. Es wurde eine Vielzahl verschiedener serumfreier Medien entwickelt [4, 5]. Diese Medien sind in der Regel speziell für die Kultur eines einzelnen Zelltyps formuliert, wie z. B. Knockout Serum Replacement und Knockout DMEM von Thermo Fisher Scientific und mTESR-Medium von Stem Cell Technologies [6] für Stammzellen [7].
Zusätzlich enthalten diese Medien definierte Mengen an gereinigten Wachstumsfaktoren, Lipoproteinen und anderen Proteinen, die sonst üblicherweise durch das Serum bereitgestellt werden [8]. Diese Medien werden oft als "definierte Kulturmedien" bezeichnet, da die Komponenten, aus denen sie bestehen, gut bekannt sind.
Chemisch definierte Medien
Diese Medien enthalten hochreine anorganische und organische Bestandteile, die durch keinerlei Verunreinigungen verunreinigt wurden. Sie können auch reine Proteinzusätze, wie z. B. Wachstumsfaktoren, enthalten.
durch die genetische Veränderung von Bakterien oder Hefen und die Zugabe von bestimmten Fettsäuren, Vitaminen, Cholesterin und Aminosäuren werden deren Bestandteile hergestellt [9].
Proteinfreie Medien
Proteinfreie Medien enthalten keinerlei Proteine, sondern nur Nicht-Protein-Elemente. Im Vergleich zu Medien mit Serumzusatz fördert die Verwendung von Medien ohne Proteinzusatz die Zellproliferation und Proteinexpression und erleichtert die Reinigung der in einem nachgeschalteten Prozess erzeugten Produkte [10-12]. Proteine sind in Formulierungen wie MEM und RPMI-1640 nicht enthalten. Bei Bedarf kann jedoch ein Proteinzusatz verabreicht werden.
Kulturmedien und ihre Grundbestandteile
Kommerzielle Nährmedien können als Pulver oder Flüssigkeit gekauft werden und enthalten oft eine Vielzahl von Nährstoffen wie Aminosäuren, Glukose, Salze, Vitamine und andere Nahrungsergänzungsmittel.
Der Bedarf an diesen Bestandteilen ist für jede Zelllinie unterschiedlich, und diese Unterschiede sind der Grund für die große Anzahl verschiedener Medienformulierungen. Jeder Bestandteil ist für eine bestimmte Funktion verantwortlich, die in den folgenden Abschnitten erläutert wird:
Puffersysteme
Um optimale Wachstumsbedingungen aufrechtzuerhalten, muss der pH-Wert kontrolliert werden, was häufig durch eines von zwei Puffersystemen geschieht:
Natürliches Puffersystem
Das CO2/H2CO3-Verhältnis in der Atmosphäre ist gleich dem des Mediums, wodurch ein natürlicher Puffermechanismus entsteht. Um den natürlichen Pufferungsmechanismus zu erhalten, müssen die Kulturen in einer Luftumgebung mit 5-10 % CO2 gehalten werden, was häufig durch die Verwendung eines CO2-Brutschranks erreicht wird. Eines der besten Argumente für die Verwendung eines natürlichen Puffers ist, dass er preiswert und sicher ist.
HEPES
Die chemische Pufferung mit dem Zwitterion HEPES hat ein größeres Puffervermögen im pH-Bereich von 7,2 bis 7,4 und benötigt keine geregelte gasförmige Umgebung. Für bestimmte Zelltypen kann eine höhere Dosis HEPES schädlich sein. HEPES-haltige Medien sind auch viel anfälliger für die phototoxischen Wirkungen von Fluoreszenzlicht [13].
Phenolrot
Der pH-Indikator Phenolrot ist häufig in handelsüblichen Nährmedien enthalten und ermöglicht eine kontinuierliche Überwachung des pH-Werts. Durch die Ausdehnung der Zellen bewirken die von diesen Zellen produzierten Metaboliten eine Verschiebung des pH-Werts und damit eine Farbänderung des Mediums. Phenolrot hat eine doppelte Wirkung auf die Farbe eines Mediums, indem es es bei saurem pH-Wert gelb und bei alkalischem pH-Wert violett färbt. pH 7,4, der optimale Wert für Zellkulturen, lässt das Medium rot fluoreszieren.
Phenolrot hat jedoch einige Nachteile: Erstens ist Phenolrot in der Lage, die Wirkung einer Reihe von Steroidhormonen zu simulieren, vor allem von Östrogen [14]. Daher wird bei der Untersuchung östrogenempfindlicher Zellen wie Brustgewebe ein Medium empfohlen, das frei von Phenolrot ist. Das Natrium-Kalium-Gleichgewicht wird durch die Anwesenheit von Phenolrot in mehreren serumfreien Formulierungen gestört. Die Zugabe von Serum oder Rinderhypophysenhormon zu den Medien kann diesem Effekt entgegenwirken [15]. Drittens wird der Nachweis in durchflusszytometrischen Experimenten durch das Vorhandensein von Phenolrot behindert.
Anorganische Salze
Medien, die anorganische Salze wie Natrium-, Kalium- und Kalziumionen enthalten, tragen zur Aufrechterhaltung des osmotischen Gleichgewichts und zur Regulierung des Membranpotenzials bei.
Aminosäuren
Da Aminosäuren die grundlegenden Bestandteile von Proteinen sind, sind sie ein wesentlicher Bestandteil jedes einzelnen Zellwachstumsmediums, das jemals erdacht wurde. Da die Zellen nicht in der Lage sind, bestimmte Aminosäuren selbst zu produzieren, ist es wichtig, dass das Nährmedium essenzielle Aminosäuren enthält. Sie sind für die Vermehrung der Zellen notwendig, und die Konzentration, in der sie vorhanden sind, bestimmt die maximale Zelldichte, die erreicht werden kann. Insbesondere L-Glutamin, eine essentielle Aminosäure, ist besonders wichtig.
L-Glutamin fungiert als sekundäre Energiequelle für den Stoffwechsel und trägt Stickstoff zur Produktion von NAD, NADPH und Nukleotiden bei. Da es sich bei L-Glutamin um eine instabile Aminosäure handelt, die mit der Zeit in eine Form übergeht, die von den Zellen nicht verwertet werden kann, muss sie dem Medium zugeführt werden.
Darüber hinaus können dem Medium auch nicht-essentielle Aminosäuren zugeführt werden, um die während des Wachstumsprozesses verbrauchten aufzufüllen. Das Wachstum der Zellen wird gefördert und ihre Lebensfähigkeit erhöht, wenn das Wachstumsmedium mit nicht-essentiellen Aminosäuren angereichert wird.
Kohlenhydrate
Kohlenhydrate in Form von Zuckern sind die Hauptenergiequelle. Viele Nährböden enthalten neben den häufigeren Zuckern Glucose und Galactose auch Maltose und Fructose.
Proteine und Peptide
Albumin, Transferrin und Fibronektin sind die am häufigsten verwendeten Proteine und Peptide. Sie sind besonders wichtig in Medien, die kein Serum enthalten. Albumin, Transferrin, Aprotinin, Fetuin und Fibronektin sind einige der Proteine, die im Serum, einem reichhaltigen Eiweißlieferanten, vorkommen können.
Albumin ist das wichtigste Protein im Blut und hat die Aufgabe, verschiedene Substanzen wie Wasser, Salze, freie Fettsäuren, Hormone und Vitamine zu binden und zwischen verschiedenen Organen und Zellen zu transportieren. Die Fähigkeit von Albumin, sich an Chemikalien zu binden, macht es zu einem wirksamen Kandidaten, um schädliche Verbindungen aus dem Medium zu entfernen, in dem Zellen gezüchtet werden.
Aprotinin ist ein Schutzmittel in Zellkultursystemen, da es bei neutralem und saurem pH-Wert stabil ist und auch hohen Temperaturen und der Zerstörung durch proteolytische Enzyme standhält. Es ist in der Lage, eine Reihe von Serinproteasen zu hemmen, unter anderem Trypsin.
Fetuin ist ein Glykoprotein, das im Serum von fötalen und neugeborenen Tieren in höheren Mengen nachgewiesen werden kann als im Serum von Erwachsenen. Darüber hinaus wirkt es als Serinproteaseinhibitor. Das Protein Fibronektin ist ein wesentlicher Bestandteil im Prozess der Zelladhäsion. Transferrin ist ein Protein, das Eisen transportiert und für den Transport von Eisen zu den Zellmembranen verantwortlich ist.
Fettsäuren und Lipide
Sie spielen eine entscheidende Rolle im serumfreien Medium, wenn kein Serum vorhanden ist.
Vitamine
Zahlreiche Vitamine sind für die Entwicklung und Vermehrung von Zellen notwendig. Vitamine können von den Zellen nicht in ausreichender Menge produziert werden und sind daher in der Gewebekultur als Nahrungsergänzungsmittel unerlässlich.
In der Zellkultur ist das Serum die Hauptquelle für Vitamine; Medien werden jedoch auch mit verschiedenen Vitaminen behandelt, um sie für einen bestimmten Zelltyp geeignet zu machen. In der Regel werden die Vitamine der B-Gruppe zur Wachstumsstimulation verwendet.
Spurenelemente
Chemische Elemente wie Kupfer, Zink, Selen und Tricarbonsäure-Zwischenprodukte werden als Spurenelemente bezeichnet. Spurenelemente werden häufig Medien zugesetzt, die kein Serum enthalten, um diejenigen zu ersetzen, die normalerweise im Serum vorhanden sind. Diese Elemente sind wichtige chemische Bestandteile, die für eine gesunde Zellentwicklung erforderlich sind. Viele biochemische Reaktionen hängen von bestimmten Mikronährstoffen ab, z. B. die Aktivität von Enzymen.
Ergänzungen zum Medium
Das für bestimmte Zelllinien empfohlene Vollwachstumsmedium benötigt zusätzliche Komponenten, die in den Basismedien und im Serum nicht enthalten sind. Diese Nahrungsergänzungsmittel unterstützen das Zellwachstum und eine angemessene Stoffwechselfunktion.
Obwohl Hormone, Wachstumsfaktoren und Signalmoleküle für die angemessene Vermehrung bestimmter Zelllinien unerlässlich sind, sollten die folgenden Vorsichtsmaßnahmen stets beachtet werden: Da die Zugabe von Ergänzungsmitteln die Osmolalität des gesamten Wachstumsmediums verändern kann, was die Zellentwicklung hemmen kann, ist es immer ratsam, die Osmolalität nach der Zugabe von Ergänzungsmitteln zu überprüfen. Für die meisten Zelllinien liegt die optimale Osmolalität zwischen 260 und 320 mOSM/kg.
Antibiotika
Antibiotika werden häufig eingesetzt, um die Entwicklung von bakteriellen und pilzlichen Verunreinigungen zu hemmen [16], obwohl sie für das Zellwachstum nicht unbedingt erforderlich sind. Da Antibiotika eine Kontamination durch Mykoplasmen und resistente Bakterien verschleiern können, wird ihr routinemäßiger Einsatz in der Zellkultur nicht empfohlen [17, 18].
Außerdem können Antibiotika den Stoffwechsel von überempfindlichen Zellen stören. Die Penicillin-Streptomycin-Kombinationen von MilliporeSigma und Life Technologies werden häufig verwendet. Plasmocin wurde bei der Kultivierung der Gliomzelllinien TS603, TS516 und BT260 eingesetzt [19] und hat sich bei der Entfernung von Mykoplasmenkontaminationen als wirksam erwiesen (20).
Serum
Albumine, Wachstumsfaktoren und Wachstumsinhibitoren sind alle im Serum vorhanden. Serum ist einer der wichtigsten Bestandteile des Zellkulturmediums, da es Aminosäuren, Proteine, Vitamine (insbesondere fettlösliche Vitamine wie A, D, E und K), Kohlenhydrate, Lipide, Hormone, Wachstumsfaktoren, Mineralien und Spurenelemente enthält.
Zur Förderung der Entwicklung kultivierter Zellen wird häufig fötales Serum oder Rinderserum verwendet. Fötalserum ist ein reichhaltiger Lieferant von Wachstumsfaktoren und eignet sich für das Klonen von Zellen und die Entwicklung empfindlicher Zellen. Aufgrund seiner geringeren wachstumsfördernden Eigenschaften wird Kälberserum bei Experimenten zur Kontakthemmung verwendet. Normale Wachstumsmedien enthalten häufig 2 bis 10 % Serum. Die Zugabe von Serum zum Nährmedium dient folgenden Zwecken [21]:
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Das Serum liefert die wesentlichen Nährstoffe für die Zellen (sowohl in Lösung als auch an Proteine gebunden).
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Das Serum enthält mehrere Wachstumsfaktoren und Hormone, die an der Wachstumsförderung und der spezialisierten Zellaktivität beteiligt sind.
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Es bietet viele Bindungsproteine, wie Albumin und Transferrin, die andere Chemikalien in die Zelle transportieren. Albumin liefert zum Beispiel Fette, Vitamine, Hormone usw. in die Zellen.
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Außerdem liefert es Proteine wie Fibronektin, die die Zellhaftung am Substrat erhöhen. Außerdem produziert es Spreizungselemente, die die Ausdehnung der Zellen vor der Teilung unterstützen.
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Es liefert Proteaseinhibitoren, die die Proteolyse in den Zellen verhindern.
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Außerdem enthält es Mineralien wie Na+, K+, Zn2+ und Fe2+.
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Es erhöht die Viskosität des Mediums und schützt so die Zellen vor mechanischen Verletzungen beim Rühren der Suspensionskultur.
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Es ist auch ein Puffer.
Referenzen
[1] Morgan J, Morton H, Parker R. Nutrition of animal cells in tissue culture; initial studies on a synthetic medium. Proc Soc Exp Biol Med. 1950;73:1-8
[2] Kerbel R, Blakeslee D. Rapid adsorption of a foetal calf serum component by mammalian cells in culture. Eine mögliche Quelle von Artefakten bei Untersuchungen von Antiseren gegen zellspezifische Antigene. Immunology. 1976;31:881-91
[3] Sula K, Draber P, Nouza K. Zusatz von Serum zum Medium, das für die Zubereitung von Zellsuspensionen verwendet wird, als mögliche Quelle von Artefakten bei zellvermittelten Reaktionen, die mit Hilfe des Popliteal-Lymphknoten-Tests untersucht werden. J Immunogenet. 1980;7:483-9
[4] Mariani E, Mariani A, Monaco M, Lalli E, Vitale M, Facchini A. Kommerzielle serumfreie Medien: Hybridomawachstum und Produktion monoklonaler Antikörper. J Immunol Methods. 1991;145:175-83
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[7] Meharena H, Marco A, Dileep V, Lockshin E, Akatsu G, Mullahoo J,et al. Down-Syndrome-induced senescence disrupt the nuclear architecture of neural progenitors. Cell Stem Cell. 2022;29:116-130.e7
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[20] Molla Kazemiha V, Azari S, Amanzadeh A, Bonakdar S, Shojaei Moghadam M, Habibi Anbouhi M,et al. Efficiency of Plasmocin™ on various mollicutes infected mammalian cell lines in comparison with commonly used antibiotics in cell culture: a local experience. Cytotechnology. 2011;63:609-20
[21] Kragh Hansen U. Molecular aspects of ligand binding to serum albumin. Pharmacol Rev. 1981;33:17-53