Cellules HEK293-TACD2
3 100,00 CAD$*
Les produits sont expédiés congelés, dans de la glace carbonique, à l'intérieur de cryotubes. Chaque cryotube contient généralement 3 × 10⁶ cellules pour les lignées adhérentes ou 5 × 10⁶ cellules pour les lignées en suspension (voir le certificat d'analyse du lot pour plus de détails).
Renseignements généraux
| Description | Avertissement : Les prix indiqués pour les lignées cellulaires s’adressent exclusivement aux clients du milieu universitaire ou à but non lucratif. Pour les entités commerciales, le prix est d’environ 6 250 €. La lignée cellulaire HEK293-TACD2 est une lignée cellulaire HEK293 recombinante stable, conçue pour exprimer le récepteur TACD2 à un niveau moyen-élevé, soit environ 10 000 molécules par cellule. Cette lignée cellulaire a été développée à l’aide de la technologie « landing pad » d’inscreenex, qui garantit une intégration précise et reproductible du gène TACD2 à un locus génomique spécifique et prévalidé. Le TACD2, également connu sous les noms de TROP2 ou GA733-1, est un transducteur de signal calcique associé aux tumeurs qui joue un rôle clé dans la signalisation calcique intracellulaire, essentielle à des processus cellulaires tels que la croissance, la division et la différenciation. Une surexpression de TACD2 a été observée dans divers carcinomes, notamment les cancers colorectaux, gastriques et pancréatiques, ce qui en fait une cible importante pour les conjugués anticorps-médicaments et l’immunothérapie. L’expression de TACD2 dans cette lignée cellulaire a été confirmée par cytométrie en flux à l’aide d’un anticorps spécifique à la cible, garantissant ainsi une densité de récepteurs fiable et constante dans l’ensemble de la population cellulaire. |
|---|---|
| Organisme | Humain |
| Tissu | Rein fœtal |
| Maladie | Transformé/immortalisé; non tumorigène (lignée HEK293) |
| Applications | Développement d’anticorps et d’ADC ciblant TROP2 (TACD2/TACSTD2) (analogues du sacituzumab govitecan); recherche sur le cancer du sein triple négatif, le cancer du poumon et le cancer urothélial; tests ADCC/CDC; cytométrie en flux |
Caractéristiques
| Âge | Fœtus |
|---|---|
| Genre | Femme |
| Morphologie | De type épithélial |
| Type de cellule | Cellules épithéliales |
| Propriétés de croissance | Monocouche, adhérente |
Données réglementaires
| Référence | HEK293-TACD2 (numéro de catalogue Cytion 305424) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 9606 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_6G29 |
| Statut OGM | GMO-S1 : Cette lignée HEK293 contient une construction d’expression de TACD2 destinée à des analyses de liaison aux récepteurs et à des analyses fonctionnelles. Cette classification ne s’applique qu’en Allemagne et peut varier dans d’autres pays. |
Données biomoléculaires
| Récepteurs exprimés | TACD2 (TROP2 ou GA733-1) |
|---|
Manipulation
| Milieu de culture | RPMI 1640, contenant 2,0 mM de glutamine stable et 2,0 g/L de NaHCO₃ (numéro d'article Cytion 820700a) |
|---|---|
| Suppléments | Compléter le milieu avec 10 % de FBS, 1 mM de pyruvate de sodium, 10 mM d’HEPES et 1 % de NEAA. Ajouter de la Geneticin (G418-Sulfat) pour obtenir une concentration finale de 1 mg/mL. |
| Réactif de dissociation | Trypsine-EDTA |
| Temps de doublement | environ 24 à 36 heures |
| Repiquage | Pour une culture cellulaire adhérente de routine : Aspirer l’ancien milieu de culture des cellules adhérentes, puis les laver avec du PBS afin d’éliminer tout résidu de milieu. Après avoir aspiré le PBS, ajouter le volume approprié de solution de trypsine/EDTA en fonction de la taille du récipient de culture (p. ex., 1 ml pour un flacon T25, 3 ml pour un flacon T75), puis incubez à température ambiante ou à 37 °C jusqu’à ce que les cellules se détachent (5 à 10 minutes). Surveillez le détachement au microscope et tapotez doucement le récipient si nécessaire pour libérer les cellules. Une fois les cellules détachées, ajoutez du milieu complet pour inactiver la trypsine/EDTA, remettez délicatement les cellules en suspension, puis transférez une aliquote de la suspension cellulaire dans un nouveau récipient de culture contenant du milieu frais. Placer le récipient dans un incubateur réglé à 37 °C avec 5 % de CO₂, et changer le milieu tous les 2 à 3 jours. |
| Rapport de fractionnement | 1 à 5 |
| Densité de semis | de 2 à 4 × 10⁴ cellules/cm² |
| Renouvellement des fluides | 2 à 3 fois par semaine |
| Rétablissement après le dégel | Après la décongélation, répartissez les cellules dans des flacons T25 selon un rapport de 1:2 à 1:3 et laissez-les se remettre du processus de congélation et adhérer pendant au moins 24 heures. Pour optimiser l’adhérence et la viabilité des cellules après la décongélation, nous recommandons d’utiliser des flacons ou des plaques enduits de collagène pour l’ensemencement initial après la cryorécupération. L’enduction de collagène n’est pas nécessaire pour la culture de routine ultérieure des cellules. |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (contenant du sérum fœtal bovin) + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation, ou du CM-1 (référence Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
|
| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
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