Cellule U2OS-CRISPR-SNAPf-SEH1
800,00 €*
I prodotti vengono spediti congelati in ghiaccio secco in criotubi. Ogni criotubo contiene in genere 3 × 10 6 cellule per le linee aderenti o 5 × 106 cellule per le linee in sospensione (per ulteriori dettagli, consultare il certificato di analisi del lotto).
Informazioni generali
| Descrizione | U2OS-CRISPR-SNAPf-SEH1 è una linea cellulare di osteosarcoma umano modificata genomicamente derivata dalle cellule U2OS in cui il gene endogeno SEH1L (SEH1) è stato modificato utilizzando la tecnologia CRISPR/Cas9 per codificare un tag SNAPf in-frame. SEH1 è un componente del complesso Y (noto anche come complesso NUP107-160), un modulo strutturale centrale del complesso dei pori nucleari (NPC) che contribuisce all'assemblaggio e alla stabilità dell'impalcatura dei pori. Inserendo la sequenza codificante SNAPf nel locus endogeno, la proteina SEH1 marcata viene espressa sotto il controllo regolatorio nativo, preservando i livelli di espressione fisiologica e riducendo al minimo le perturbazioni della composizione dei pori nucleari. Il tag SNAPf è una variante ingegnerizzata e a reazione rapida del tag SNAP che si lega in modo covalente ai substrati coniugati con benzilguanina, consentendo una marcatura fluorescente selettiva e stabile in cellule vive o fissate. Nelle cellule U2OS-CRISPR-SNAPf-SEH1, la proteina di fusione si localizza nell'involucro nucleare con un pattern puntiforme caratteristico della distribuzione dell'NPC. Poiché l'etichettatura avviene a livelli proteici endogeni, questo sistema è particolarmente adatto per la microscopia a fluorescenza quantitativa, l'imaging a super risoluzione e le analisi di tracciamento di singole particelle volte a sezionare l'organizzazione e la stechiometria degli NPC. La morfologia piatta e i nuclei grandi delle cellule U2OS facilitano ulteriormente la visualizzazione ad alta risoluzione delle strutture dell'involucro nucleare. SEH1 partecipa alla biogenesi NPC ed è stato anche implicato nei processi associati al cinetocoro durante la mitosi. Di conseguenza, questa linea cellulare fornisce una solida piattaforma per lo studio dell'assemblaggio e del disassemblaggio NPC dipendente dal ciclo cellulare, dell'organizzazione spaziale del complesso Y all'interno dello scaffold poroso e dei potenziali ruoli duali di SEH1 nell'involucro nucleare e nei cinetocori mitotici. U2OS-CRISPR-SNAPf-SEH1 consente studi meccanicistici dell'architettura e della dinamica dei pori nucleari in condizioni di espressione fisiologicamente rilevanti. |
|---|---|
| Organismo | Umano |
| Tessuto | Osso |
| Malattia | Osteosarcoma |
Caratteristiche
| Età | 15 anni |
|---|---|
| Genere | Donna |
| Etnia | Caucasico |
| Morfologia | Simile all'epitelio |
| Proprietà di crescita | Aderente |
Dati normativi
| Citazione | U2OS-CRISPR-SNAPf-SEH1 (numero di catalogo Cytion 300664) |
|---|---|
| Livello di biosicurezza | 1 |
| NCBI_TaxID | 9606 |
| Depositante | Il laboratorio Ellenberg (EMBL) |
| Stato degli OGM | GMO-S1: questa linea cellulare di osteosarcoma umano (U2OS-CRISPR-SNAPf-SEH1) contiene una fusione SNAPf-SEH1 mediata da CRISPR che consente l'etichettatura selettiva della nucleoporina SEH1. La modifica è presente in modo stabile. Questa classificazione si applica solo in Germania e può differire altrove. |
Dati biomolecolari
| Espressione proteica | SEH1, tag SNAPf |
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Manipolazione
| Terreno di coltura | McCoys 5a, w: 3,0 g/L Glucosio, w: Glutammina stabile, w: 2,0 mM Sodio piruvato, w: 2,2 g/L NaHCO3 (articolo Cytion numero 820200a) |
|---|---|
| Integratori | Integrare il terreno di coltura con 10% FBS, 3,0 g/L di glucosio, Glutammina stabile, 2,0 mM di piruvato di sodio, 2,2 g/L di NaHCO3, 1% di NEAA |
| Reagente di dissociazione | Accutase |
| Sottocoltura | Rimuovere il vecchio terreno dalle cellule aderenti e lavarle con PBS privo di calcio e magnesio. Per le fiasche T25, utilizzare 3-5 ml di PBS e per le fiasche T75, 5-10 ml. Quindi, coprire completamente le cellule con Accutase, utilizzando 1-2 ml per le fiasche T25 e 2,5 ml per le fiasche T75. Lasciare incubare le cellule a temperatura ambiente per 8-10 minuti per staccarle. Dopo l'incubazione, mescolare delicatamente le cellule con 10 ml di terreno per risospenderle, quindi centrifugare a 300xg per 3 minuti. Scartare il surnatante, risospendere le cellule in terreno fresco e trasferirle in nuove fiasche contenenti terreno fresco. |
| Prodotto da congelare | Come terreno di crioconservazione, utilizziamo un terreno di crescita completo (incluso FBS) + 10% DMSO per un'adeguata vitalità post-scongelamento, o CM-1 (numero di catalogo Cytion 800100), che include osmoprotettori e stabilizzatori metabolici ottimizzati per migliorare il recupero e ridurre lo stress crio-indotto. |
| Scongelamento e coltura delle cellule |
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| Atmosfera di incubazione | 37°C, 5%CO2, atmosfera umidificata. |
| Rivestimento del pallone | Per un attaccamento e una vitalità ottimali dopo lo scongelamento, si consiglia di utilizzare fiasche o piastre rivestite di collagene. |
| Procedura di congelamento | Le linee cellulari crioconservate vengono spedite su ghiaccio secco in confezioni isolate e convalidate, con una quantità di refrigerante sufficiente a mantenere circa -78 °C durante il trasporto. Al ricevimento, ispezionare immediatamente il contenitore e trasferire immediatamente le fiale in un luogo di conservazione appropriato. |
| Condizioni di spedizione | Le linee cellulari crioconservate vengono spedite su ghiaccio secco in confezioni isolate e convalidate, con una quantità di refrigerante sufficiente a mantenere circa -78 °C durante il trasporto. Al ricevimento, ispezionare immediatamente il contenitore e trasferire immediatamente le fiale in un luogo di conservazione appropriato. |
| Condizioni di conservazione | Per la conservazione a lungo termine, porre le fiale in azoto liquido in fase vapore a una temperatura compresa tra -150 e -196 °C circa. La conservazione a -80 °C è accettabile solo come breve fase intermedia prima del trasferimento in azoto liquido. |
Controllo di qualità / Profilo genetico / HLA
| Sterilità | La contaminazione da micoplasma viene esclusa utilizzando sia saggi basati sulla PCR sia metodi di rilevamento del micoplasma basati sulla luminescenza. Per garantire l'assenza di contaminazione batterica, fungina o da lieviti, le colture cellulari sono sottoposte a ispezioni visive quotidiane. |
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