HepG2 sejtek - Májrákkutatási erőforrás

AHep-G2 egy emberi májrákos sejtvonal, amely egy 15 éves kaukázusi férfi májszövetéből származik, aki hepatocelluláris karcinómában szenvedett. Ezeket a sejteket gyakran használják gyógyszer-metabolizmus és májtoxicitás vizsgálatokban. Bár a HepG2 sejtek magas proliferációs rátával és epithelszerű megjelenéssel rendelkeznek, nem tumorigén és különböző differenciált májfunkciókat látnak el. 1975-ben a kutatók a HepG2 sejteket hepatocelluláris karcinómából származtatták, így ez volt az első májsejtvonal, amely a hepatociták kritikus jellemzőit mutatta. A korábban létrehozott SK-Hep1 sejtvonallal ellentétben, amelyből hiányoznak az alapvető májsejtmarkerek, a HepG2 sejtek képesek különböző plazmafehérjéket szekretálni, és értékes modellt biztosítanak a humán hepatociták sejtfelszíni domének intracelluláris dinamikájának tanulmányozásához. Ezek a sejtek epithelszerű morfológiát mutatnak, kromoszómaszámuk 55, és humán növekedési hormonnal stimulálhatók.

3d renderelt orvosi animáció egy rosszindulatú daganatról egy férfi májában.

HepG2 jellemzők

Az elsődleges hepatociták tipikus alakja kocka alakú, és általában két magot tartalmaz. Ezzel szemben a HepG2 sejtek epithelszerű morfológiával rendelkeznek, egyetlen sejtmaggal és sejtenként 48-54 kromoszóma számmal. Bár a HepG2 sejtek a teljes sejtfehérje akár 25%-át is kitehetik, méretük nagyobb, mint a normál hepatocitáké, a teljes sejtfehérje mintegy 10%-át teszik ki. A sejtfehérjék kritikus szereplők a sejten belül, a gének által meghatározott funkciókat hajtják végre.

A daganatos sejtek, beleértve a kromoszómák rendellenes számával rendelkező sejteket is, gyakran mutatják a sejtmagok számának növekedését, sejtenként akár hétre is. Magas fokú in vitro differenciáltságuk miatt a HepG2 sejtek ideális modellt jelentenek az epecsatorna-, szinuszoidális membránfehérjék és lipidek intracelluláris forgalmának és dinamikájának tanulmányozására a humán hepatocitákban.

A HepG2 sejtek átlagos átmérője 10-20 µm körül van, ami kisebb, mint a 15 µm átmérőjű hepatocitáké, de hasonló a hepatoblasztóma (HB) tumorsejtjeihez, amelyek átmérője 10-20 µm között mozog.

HepG2 genetika

A Hep-G2 sejtvonal számos transzlokációt mutat, többek között az 1. és 21. kromoszóma rövid karjai között, a 2., 16. és 17. kromoszóma triszómiáit, valamint a 20. kromoszóma tetraszómiáját. A 4q3 kromoszóma régiójának elvesztése is megfigyelhető, amely a hepatoblasztómában (HB) gyakran megfigyelhető t(1;4) transzlokációhoz és más kromoszóma-rendellenességekhez, például a 2. és 20. kromoszóma triszómiájához társul. A HepG2 sejtekben a kromoszómák száma 50 és 60 között mozog, ami hiperdiploid kariotípust jelez, míg egyes esetekben több mint 100 kromoszómát mutatnak, és tetraploid megnagyobbodás jellemzi őket. A HepG2 sejtek körülbelül 7,5 pg DNS-t tartalmaznak, 15%-kal többet, mint egy átlagos szomatikus sejt. Ehhez képest a primer hepatociták kocka alakú sejtek, és jellemzően két sejtmagot tartalmaznak [1].

A HepG2 sejtek mutációs profilja

A HepG2 sejtvonal a TERT promóter régió C228T mutációját hordozza, amely a hepatocelluláris karcinómában (HCC) és a hepatoblasztómában (HB) is jelen van. Ez a mutáció a rákos sejtek telomerjeinek védelme révén hozzájárul az immortalizációhoz. Emellett a HepG2 sejtek vad típusú TP53-at mutatnak, amely kritikus gén az emberi rák elnyomása szempontjából, mivel szerepet játszik a sejtciklus megállításában, az apoptózisban és az öregedésben. E gén mutációi elősegíthetik a sejtek proliferációját.

A HepG2 sejtek számos útvonalban vesznek részt, beleértve a sejtnövekedés, a túlélési útvonalak, mint például a magzati és embrionális HB, valamint a Wnt/β-katenin útvonal diszregulációját. A sejtvonal továbbá a CTNNB1 gén harmadik exonjának jellegzetes deléciójával rendelkezik, amely megegyezik az epithelialis típusú HB-ban megfigyelhető delécióval [2,3].

HepG2 sejtek növekedése a szigetekben 20x és 10x nagyításban.

A HepG2 hepatocelluláris karcinóma sejtek áttekintése a májkutatásban

Az emberi hepatomából származó HepG2 sejtek felbecsülhetetlen értékű eszközzé váltak a májfunkciók és a májbetegségek, köztük a hepatocelluláris karcinóma kutatásában. Ezek a májsejtvonalak betekintést nyújtanak a humán hepatociták sejtválaszaiba különböző kísérleti körülmények között. A luciferáz riporter plazmidok használata a HepG2 sejtekben különösen hatékony a génexpresszió és a sejttranszfekciók nyomon követésére, amelyek alapvető fontosságúak az anyagcsere-kutatásban, például az etanol májsejtekre gyakorolt hatásának vizsgálatában

Vírusfertőzések és májbetegségek vizsgálata HepG2 sejtek felhasználásával

Az olyan immortalizált májtumor-sejtvonalak, mint a HepG2 és a Huh7, alapvető fontosságúak a vírusfertőzések tanulmányozásában, mivel a hepatitis D (HDV) teljes sejtciklusú replikációját és a hepatitis B (HBV) expresszióját mutatják [5,6]. Ezzel párhuzamosan a HepaRG sejtvonalak kritikus szerepet játszanak a HBV belépési mechanizmusainak feltárásában [7]. A HepG2 sejteket számos humán májbetegség vizsgálatára is alkalmazzák, a genetikai állapotoktól kezdve, mint a progresszív familiáris intrahepatikus kolesztázis (PFIC) és a Dubin-Johnson-szindróma, a citotoxikus és genotoxikus szerekkel kapcsolatos környezeti és étrendi vizsgálatokig, valamint a gyógyszercélzás és a hepatokarcinogenezis kutatásában [8,9]. Használatuk kiterjed a bio-mesterséges májeszközökkel végzett vizsgálatokra is

A HepG2 sejtek kölcsönhatásai a biomatériákkal a szövetszerkesztés során

A HepG2 sejtek és a különböző biomaterialok kölcsönhatása kulcsfontosságú a szövetmérnöki munkában. Az olyan technikák, mint a kolloid szondatechnika, segítenek megérteni ezeket a kölcsönhatásokat a sejtek adhéziós tulajdonságainak mérésével, amelyek létfontosságúak a sejtek életképességének meghatározásához az állványok és a pontos májszövetmodellek kifejlesztéséhez

A sejtek viselkedése és innovációk a HepG2-alapú modellekben

A sejtek viselkedésének tanulmányozása a HepG2-alapú modellekben kulcsfontosságú a májbetegségek kutatásában. A háromdimenziós szferoid sejtkultúrákban elért fejlődés a HepG2 sejtek szferoidjainak létrehozásához vezetett, amelyek fiziológiailag relevánsabb modellt kínálnak, amely a normális hepatocitákhoz közelebb áll. Ezek a fokozott metabolikus aktivitással rendelkező 3D modellek azt jelzik, hogy a HepG2 sejtek a hepatoblasztóma modelljeként szolgálhatnak, és jelentősek a rákkezelési kutatásokban, különösen a májtumorok szimulálása és az új terápiás megközelítések tesztelése szempontjából [10-12]

A HepG2 összehasonlítása és jellemzői más tumorsejtvonalak között

A HepG2 az egyik legszélesebb körben használt májtumor-sejtvonal, amelyet a tudományos kutatásban való széles körű alkalmazása miatt választottak ki a mintegy 40 rendelkezésre álló májtumor-sejtvonal közül [13]. Annak ellenére, hogy bizonyos citokróm P450 enzimek a normál hepatocitákhoz képest gyengén vagy egyáltalán nem expresszálódnak, a HepG2 metabolikus profilja ösztönözte a sejtvonal módosítására irányuló erőfeszítéseket a jobb gyógyszeranyagcsere-vizsgálatok érdekében [13]. Az olyan tumoros sejtvonalakkal összehasonlítva, mint az MCF7, PC3, 143B és HEK293, a HepG2 sejtek egyedi aminosavtartalom-profilt mutatnak, amely jelentősen befolyásolja a fehérjeszintézist és a szekréciót, kiemelve egyedi metabolikus útvonalaikat [14]

A májbetegségekkel kapcsolatos kutatások felfedezése a HepG2-vel

HepG2 sejtek szubkultiválása

Az alábbi öt lépésben eltávolíthatjuk az Accutase segítségével a sejttenyésztő lombikokból a megtapadt sejteket:

  1. Távolítsa el a tápfolyadékot a sejttenyésztő lombikból, és öblítse le a megtapadt sejteket kalcium- és magnéziummentes PBS-sel. T25-ös lombikokhoz 3-5 ml PBS-t, T75-ös lombikokhoz 5-10 ml-t használjon.
  2. Adjunk Accutázt a sejttenyésztő lombikhoz, T25 lombikonként 1-2 ml-t, T75 lombikonként 2,5 ml-t használva. Ügyeljen arra, hogy az Accutase a teljes sejtlapot befedje.
  3. Inkubálja a lombikot szobahőmérsékleten 8-10 percig.
  4. Óvatosan reszuszpendálja a sejteket a tápfolyadékkal, 10 ml friss tápfolyadékot használva.
  5. Centrifugálja a reszuszpendált sejteket 5 percig 300xg-nél, szuszpendálja őket újra friss tápfolyadékban, és adagolja őket friss tápfolyadékot tartalmazó új lombikokba.

A HepG2 sejtek jövőbeli kilátásai

A HepG2 sejtvonalban rejlő teljes potenciál feltárása a citokrómok expressziójának növelése terén elért úttörő eredményekkel folytatódik. A kutatók a háromdimenziós szferoid sejtkultúrák lehetőségét is vizsgálják, amelyek fiziológiailag relevánsabb rendszert kínálnak. A metabolikus aktivitás, beleértve a citokrómokat is, figyelemre méltóan magasabb a 3D szferoid HepG2 modellekben, mint a 2D sejtekben, ami közelebb visz minket egy olyan modell létrehozásához, amely a normális hepatocitákat tükrözi. Emellett a sejtfelszíni fehérjék helytelen eloszlásának hátterében álló dinamikus folyamatok feltárása utat nyithat a májbetegségek jobb megértéséhez

HepG2 sejtek: GYIK

Hivatkozások

  1. Vyas, R.C., Darroudi, F., Natarajan, A.T. Radiation-induced chromosomal breakage and rejoining in interphase-metaphase chromosomes of human lymphocytes, Mutat Res, 1991; 249(1):29-35.
  2. Woodfield, S.E., Shi, Y., Patel, R.H., Chen, Z., Shah, A.P., Srivastava, R.K., Whitlock, R.S., Ibarra, A.M., Larson, S.R., Sarabia, S.F., et al. MDM4 Inhibition: Új terápiás stratégia a P53 reaktiválására a hepatoblasztómában. Sci. Rep. 2021, 11, 2967.
  3. Hussain, S.P., Schwank, J., Staib, F., Wang, X.W., Harris, C.C. TP53 Mutations and hepatocellular Carcinoma: Insights into the Etiology and Pathogenesis of Liver Cancer. Oncogene 2004.
  4. Schicht, G., Seidemann, L., Haensel, R., Seehofer, D., Damm, G. Kritikai vizsgálat a Hepatoma sejtvonalak HepG2 és Huh7 használhatóságáról, mint modellekről a reszekálható hepatocelluláris karcinóma metabolikus reprezentációjára. Cancers 2022, 14(17), 4227.
  5. Verrier, E.R., Colpitts, C.C., Schuster, C., Zeisel, M.B., Baumert, T.F. Cell culture Models for the Investigation of Hepatitis B and D Virus Infection. Viruses 2016, 8, 261.
  6. Verrier, E.R., Colpitts, C.C., Bach, C., Heydmann, L., Weiss, A., Renaud, M., Durand, S.C., Habersetzer, F., Durantel, D., AbouJaoudé, G., et al. A Targeted Functional RNA Interference screen Uncovers Glypican 5 as an Entry Factor for Hepatitis B and D Viruses. Hepatology 2016, 63, 35-48.
  7. Gripon, P., Rumin, S., Urban, S., Le Seyec, J., Glaise, D., Cannie, I., Guyomard, C., Lucas, J., Trepo, C., Guguen-Guillouzo, C. Infection of a Human Hepatoma Cell Line by Hepatitis B Virus. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2002, 99, 15655-15660.
  8. Mersch-Sundermann, V., Knasmüller, S., Wu, X.J., Darroudi, F., Kassie, F. Egy humán eredetű májsejtvonal felhasználása citoprotektív, antigenotoxikus és kogenotoxikus anyagok kimutatására. Toxikológia. 2004; 198(1-3): 329-340.
  9. Fanelli, A. HepG2 (máj hepatocelluláris karcinóma): sejttenyésztés. HepG2. Letöltve 2017. december 3.
  10. Xuan, J., Chen, S., Ning, B., Tolleson, W.H., Guo, L. Cytochrome P450-eket expresszáló HepG2-eredetű sejtek fejlesztése a metabolizmushoz kapcsolódó gyógyszer-indukált májtoxicitás értékelésére. Physiol. Behav. 2017, 176, 139-148.
  11. Ooka, M., Lynch, C., Xia, M. Az in vitro anyagcsere-aktiválás alkalmazása a nagy áteresztőképességű szűrésben. Int. J. Mol. Sci. 2020, 21, 8182.
  12. Huang, L., Coughtrie, M.W.H., Hsu, H. A dehidroepiandroszteron-szulfotranszferáz gén lefelé szabályozása humán hepatocelluláris karcinómában. Mol. Cell. Endocrinol.
  13. Zhu, Z., Hao, X., Yan, M., et al. Cancer stem/progenitor cells are highly enriched in CD133 + CD44 + population in hepatocellular carcinoma. Int J Cancer. 2010; 126:2067-2078.
  14. Arbus, C., Benyamina, A., Llorca, P.-M., Baylé, F., Bromet, N., Massiere, F., Garay, R.P., Hameg, A. A cianemazin metabolizmusában részt vevő humán citokróm P450 enzimek jellemzése. Eur J Pharm Sci. 2007 Dec;32(4-5):357-66.

Azt észleltük, hogy Ön egy másik országban él, vagy a jelenleg kiválasztottól eltérő böngészőnyelvet használ. Szeretné elfogadni a javasolt beállításokat?

Zárja be a