J82 Zellen

Name: CLS Cell Lines Service GmbH
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375,00 €*

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Produktnummer: 305055

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Product sheet

Beschreibung	Die J82-Zelllinie stammt von einem menschlichen Blasenzellkarzinom und bietet ein robustes In-vitro-Modell für die Untersuchung von Urothelkrebs. Diese Zellen weisen eine epitheliale Morphologie auf und haften in der Kultur, so dass sie sich für eine Vielzahl von experimentellen Anwendungen eignen, darunter krebsbiologische Forschung, Wirkstoffscreening und molekulare Analysen. J82-Zellen sind dafür bekannt, dass sie Marker exprimieren, die für Blasenkarzinome charakteristisch sind, darunter Cytokeratine, die für das Verständnis der molekularen Pfade, die am Fortschreiten des Blasenkrebses beteiligt sind, und für die Identifizierung potenzieller therapeutischer Ziele wertvoll sind. Die J82-Zelllinie eignet sich besonders für Studien, die sich mit den Mechanismen der Arzneimittelresistenz, der Metastasierung und der Rolle von Genmutationen bei Blasenkrebs befassen. Forscher haben diese Zelllinie genutzt, um die Wirkung von Chemotherapeutika zu untersuchen und neue Substanzen zu identifizieren, die das Wachstum von Krebszellen hemmen könnten. Darüber hinaus werden J82-Zellen häufig in Genexpressionsstudien verwendet, um die Regulation von Onkogenen und Tumorsuppressorgenen im Zusammenhang mit Blasenkrebs zu untersuchen. Wie alle Krebszelllinien sollte auch J82 unter strengen Laborbedingungen gehandhabt werden, um sicherzustellen, dass sie nur für Forschungszwecke und nicht für therapeutische oder In-vivo-Zwecke verwendet werden.
Organismus	Menschen
Gewebe	Harnblase
Krankheit	Harnblasenkarzinom
Synonyme	J-82, J 82, J82COT, J82 COT

Alter	58 Jahre
Geschlecht	Männlich
Ethnizität	Europäisch
Morphologie	Epithelial
Wachstumseigenschaften	Adhärent

Zitat	J82 (Cytion-Katalognummer 305055)
Biosicherheitsstufe	1

Antigenexpression	HLA A2, Aw32, B5, B12, Cw5, Blutgruppe A
Tumorigene	Ja

Nährboden	EMEM, w: 2 mM L-Glutamin, w: 1,5 g/L NaHCO3, w: EBSS, w: 1 mM Natriumpyruvat, w: NEAA (Cytion-Artikelnummer 820100c)
Mittlere Supplemente	Supplemente des Mediums mit 10% FBS
Passage-Lösung	Accutase
Subkultivierung	Entfernen Sie das alte Medium von den adhärenten Zellen und waschen Sie sie mit PBS, das kein Kalzium und Magnesium enthält. Für T25-Kolben 3-5 ml PBS und für T75-Kolben 5-10 ml verwenden. Anschließend werden die Zellen vollständig mit Accutase bedeckt, wobei 1-2 ml für T25-Kolben und 2,5 ml für T75-Kolben verwendet werden. Lassen Sie die Zellen 8-10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren, um sie abzulösen. Nach der Inkubation mischen Sie die Zellen vorsichtig mit 10 ml Medium, um sie zu resuspendieren, und zentrifugieren sie dann 3 Minuten lang bei 300xg. Den Überstand verwerfen, die Zellen in frischem Medium resuspendieren und in neue Kolben überführen, die bereits frisches Medium enthalten.
Splitverhältnis	1:2 bis 1:4
Medienwechsel	2 bis 3 Mal pro Woche
Einfriermedium	CM-1 (Cytion Katalognummer 800100) oder CM-ACF (Cytion Katalognummer 806100)
Handhabung von kryokonservierten Kulturen	Vergewissern Sie sich, dass das Fläschchen bei der Lieferung tiefgefroren ist, da die Zellen auf Trockeneis versandt werden, um während des Transports optimale Temperaturen zu erhalten. Lagern Sie das Kryofläschchen nach Erhalt entweder sofort bei Temperaturen unter -150 °C, um die Unversehrtheit der Zellen zu gewährleisten, oder fahren Sie mit Schritt 3 fort, wenn eine sofortige Kultivierung erforderlich ist. Für eine sofortige Kultivierung tauen Sie das Fläschchen schnell auf, indem Sie es in ein 37°C warmes Wasserbad mit sauberem Wasser und einem antimikrobiellen Mittel eintauchen und 40-60 Sekunden lang vorsichtig schütteln, bis ein kleiner Eisklumpen zurückbleibt. Führen Sie alle nachfolgenden Schritte unter sterilen Bedingungen in einer Abzugshaube durch und desinfizieren Sie das Kryo-Fläschchen vor dem Öffnen mit 70%igem Ethanol. Das desinfizierte Fläschchen vorsichtig öffnen und die Zellsuspension unter vorsichtigem Mischen in ein 15-ml-Zentrifugenröhrchen mit 8 ml Kulturmedium bei Raumtemperatur überführen. Zentrifugieren Sie das Gemisch 3 Minuten lang bei 300 x g, um die Zellen abzutrennen, und verwerfen Sie den Überstand mit dem restlichen Gefriermedium vorsichtig. Sie können die Zentrifugation auch überspringen, aber das restliche Gefriermedium nach 24 Stunden entfernen. Das Zellpellet vorsichtig in 10 ml frischem Kulturmedium resuspendieren. Bei adhärenten Zellen die Suspension auf zwei T25-Kulturflaschen aufteilen; bei Suspensionskulturen das gesamte Medium in eine T25-Flasche überführen, um eine effektive Zellinteraktion und ein effektives Wachstum zu fördern. Halten Sie sich an die festgelegten Subkulturprotokolle, um ein kontinuierliches Wachstum und die Aufrechterhaltung der Zelllinie zu gewährleisten und zuverlässige Versuchsergebnisse zu erzielen.

Sterilität	Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen. Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft.
STR profile	Amelogenin: x,y CSF1PO: 10,11 D13S317: 10,12 D16S539: 11,12 D5S818: 12,13 D7S820: 9,11 TH01: 09. Mrz TPOX: 11,12 vWA: 17,18 D3S1358: 16,18 D21S11: 30,31 D18S51: 10,12 Penta E: 12,15 Penta D: 9,13 D8S1179: 8,13 FGA: 20,24 D1S1656: 14 D6S1043: 19 D2S1338: 19 D12S391: 24 D19S433: 12,13

J82 Zellen

Allgemeine Informationen

Merkmale

Identifikatoren / Biologische Schutzstufe / Zitation

Expression / Mutation

Handhabung

Qualitätskontrolle / Genetisches Profil / HLA