انتقل إلى الصفحة الرئيسية

خلايا NIH-3T3: دفع عجلة أبحاث الخلايا الليفية وتطبيقات NIH-3T3

أصبح خط الخلايا NIH-3T3، الذي أنشأه هوارد غرين وجورج تودارو في كلية الطب بجامعة نيويورك عام 1962 من نسيج جنين فأر سويسري ألبينو يبلغ عمره 17 يومًا، موردًا أساسيًا في مجال البحوث الطبية الحيوية. وتُعرف خلايا NIH-3T3 بقدرتها العالية على استقبال فيروس اللوكيميا وفيروس الساركوما وتكوين بؤر لهما، مما يجعلها أداة حاسمة في العديد من الأبحاث العلمية، بما في ذلك دراسات الأورام الفيروسية، وتحليل التعبير الجيني، واستكشاف ديناميكيات النمو الخلوي. تعكس تسمية «3T3» طريقة زراعة الخلايا، حيث تشير إلى فترة «نقل كل 3 أيام» مع كثافة بذر أولية تبلغ 3 × 10^5 خلية، مما يسلط الضوء على الظروف المعيارية التي تمت في ظلها زراعة هذه الخلايا وتكاثرها لأول مرة.

📋 سلالة الخلايا NIH-3T3 — حقائق سريعة
وسط النمو
انظر صفحة المنتج
زمن التضاعف
انظر صفحة المنتج
نوع النمو
متصلب
مستوى السلامة الحيوية
BSL-1
متوفر من
Cytion — اطلب NIH-3T3

التنوع في الأشكال والتطبيقات لخلايا NIH-3T3

تتمثل إحدى السمات المميزة لخلايا NIH-3T3 في قدرتها على التكيف المورفولوجي، والتي تختلف بشكل كبير مع كثافة الاستزراع. عند الكثافات المنخفضة، تظهر هذه الخلايا الليفية بنية خلوية منفردة على شكل مغزل، ثم تتطور إلى أنماط كثيفة ودوامة مع وصول المجموعة إلى حالة التكاثف. وبقطر يبلغ في المتوسط حوالي 18 ميكرومتر، تُعد خلايا NIH-3T3 نموذجًا متعدد الاستخدامات لإجراء دراسات متعمقة في بيولوجيا الخلية، بدءًا من آليات إصلاح الأنسجة وصولًا إلى المسارات المعقدة لتنظيم دورة الخلية.

NIH 3T3 cells at high and low confluence

خلايا NIH-3T3 في حالات التكتل العالي والمنخفض.

معلومات حول الاستزراع

  • التفاصيل الأساسية للزراعة:

    • زمن مضاعفة الكتلة الحيوية: حوالي 20 ساعة.

    • نوع النمو: مزارع ملتصقة.

    • كثافة البذر: الموصى بها: 3 إلى 4 × 10^4 خلية/سم^2.

    • وسط النمو: DMEM أو Ham's F12، مع إضافة 5% FBS و2.5 مليمول L-glutamine.

    • ظروف النمو: يُحفظ عند 37 درجة مئوية في حاضنة مرطبة تحتوي على 5% من ثاني أكسيد الكربون.

    • التخزين: يُحفظ عند درجات حرارة أقل من -195 درجة مئوية في الطور البخاري للنيتروجين السائل.

    • طريقة التجميد: استخدم وسط CM-1 أو CM-ACF؛ استخدم طريقة التجميد البطيء (انخفاض درجة الحرارة بمقدار 1 درجة مئوية).

    • بروتوكول الذوبان: التسخين السريع في حمام مائي بدرجة حرارة 37 درجة مئوية، يليه الطرد المركزي لإزالة وسط التجميد، ثم إعادة التعليق في وسط النمو.

    • مستوى السلامة الحيوية: تتطلب عملية الاستزراع بيئة من مستوى السلامة الحيوية 1.

Swiss Albino mouse in modern laboratory next to ampoules with medicine

فأر سويسري ألبينو في أحد المختبرات.

إيجابيات وسلبيات استخدام خلايا NIH 3T3

المزايا

  • كفاءة التحويل الجيني: تشتهر خلايا NIH-3T3 بمعدلات التحويل الجيني العالية، وهي ممتازة لدراسات التعبير الجيني المؤقتة والمستقرة على حد سواء، حيث تتوافق مع مجموعة متنوعة من تقنيات التحويل الجيني.

  • فائدة طبقة التغذية: غالبًا ما تعمل هذه الخلايا كطبقة تغذية داعمة للزراعة المشتركة مع خلايا مثل الخلايا الكيراتينية والخلايا الجذعية، وذلك بفضل إفرازها لعوامل النمو التي تعزز نمو الخلايا المزروعة معًا.

  • أبحاث الخلايا الجذعية: تُعد خلايا NIH-3T3 الخيار المفضل في أبحاث الخلايا الجذعية لتحفيز تعدد القدرات دون تعديل جيني وتوفير بيئة مواتية لتمايز الخلايا الجذعية.

  • استقرار الاستزراع: تشتهر خلايا NIH-3T3 باستقرارها وانخفاض معدل حدوث التحول التلقائي فيها. ومع ذلك، في ظل ظروف معينة أو بعد التعرض لجينات سرطانية أو عوامل طفرات محددة، يمكن أن تخضع خلايا NIH-3T3 لتحوّل تلقائي. يمكن أن يؤدي هذا التحوّل إلى اكتساب خصائص سرطانية مثل النمو غير المنضبط، وفقدان تثبيط التلامس، والقدرة على تكوين أورام عند حقنها في مضيفات قابلة للإصابة. 

العيوب

  • حجم الخلايا غير المتسق: يمكن أن يتباين الشكل الممدود الذي يشبه المغزل لخلايا NIH-3T3، مما يعقد تحليلات الصور في الاختبارات.

  • قابلية الإصابة بالعدوى: هذه الخلايا معرضة للإصابة بالعدوى البكتيرية والميكوبلازمية إذا لم يتم الحفاظ عليها في ظروف معقمة صارمة، مما قد يؤثر على سلامة التجربة.

التطبيقات البحثية لخلايا NIH-3T3

  • دراسات نقل الحمض النووي (DNA): تجعل متانة خلايا NIH-3T3 منها خيارًا مثاليًا لإدخال جينات مختلفة ودراسة وظائفها، وهو ما تم إثباته في الأبحاث التي تدرس بروتينات مثل NAB2-STAT6 ودورها في العمليات الخلوية.

  • الاختبارات القائمة على الخلايا: تمتد موثوقية هذه الخلايا لتشمل اختبارات متنوعة، بما في ذلك اختبارات قابلية البقاء على قيد الحياة، وموت الخلايا المبرمج، وتكوين البؤر، مما يوفر رؤى حول الاستجابات الخلوية في ظل ظروف تجريبية مختلفة.

  • أبحاث دورة الخلية: إن سهولة التحكم في دورة الخلية لهذا الخط الخلوي من خلال مستويات المصل تجعله نموذجًا فعالًا لدراسة تنظيم دورة الخلية وانحرافاتها في سياقات الأمراض.

ارتقِ بأبحاثك باستخدام خلايا NIH-3T3

تسليط الضوء على الدراسات الرئيسية التي استخدمت خط الخلايا الليفية NIH 3T3 

لقد كان خط الخلايا NIH-3T3 محوريًا في العديد من المشاريع البحثية، التي تغطي جوانب مختلفة من بيولوجيا الخلية. وفيما يلي بعض الدراسات المهمة التي استخدمت هذه الخلايا:

الموارد الأساسية لأبحاث خلايا NIH-3T3

للباحثين المهتمين بالعمل مع خلايا NIH-3T3، تتوفر مجموعة متنوعة من الموارد لتوجيه بروتوكولات الاستزراع والتجارب:

  • تكوين الكريات في خلايا NIH-3T3: يقدم هذا الفيديو شرحًا تفصيليًا لتكوين الكريات، وهي تقنية زراعة خلايا ثلاثية الأبعاد تعمل على تجميع خلايا NIH-3T3 في مجموعات، مما يوفر نموذجًا أكثر ملاءمة من الناحية الفسيولوجية للدراسات.
  • مراقبة نمو خلايا NIH-3T3: من خلال نظام تصوير الخلايا الحية JuLI Br، يلتقط هذا الفيديو ديناميكيات نمو خلايا NIH-3T3 على مدار 65 ساعة، ويُظهر تكاثر الخلايا في الوقت الفعلي.

تهدف هذه الموارد إلى دعم جهودكم البحثية باستخدام خلايا NIH-3T3، مما يوفر أساسًا لإجراء تجارب ناجحة وتحقيق اكتشافات.

الأسئلة المتداولة عن خلايا NIH-3T3

المراجع

  1. Rahimi, A.M., M. Cai, and S. Hoyer-Fender, Heterogeneity of the NIH3T3 Fibroblast Cell Line. Cells, 2022. 11(17): p. 2677.
  2. Leibiger, C.، وآخرون، أول توصيف جزيئي وخلوي عالي الدقة لسلسلة الخلايا NIH 3T3 باستخدام تقنية التلوين متعدد الألوان للفئران. Journal of Histochemistry & Cytochemistry، 2013. 61(4): ص. 306-312.
  3. Wang, H.-X.، وآخرون، تحليل مقارن لطبقات مغذية مختلفة مع الخلايا الليفية 3T3 لزراعة الخلايا الجذعية الحوفيّة للأرانب. International Journal of Ophthalmology، 2017. 10(7): ص. 1021.
  4. Wang, Z.، وآخرون، «تمايز الخلايا العصبية من الخلايا الليفية NIH/3T3 في ظل ظروف محددة». مجلة «التطور والنمو والتمايز»، 2011. 53(3): ص. 357-365.
  5. بارك، ي.-س.، وآخرون، بروتين الاندماج NAB2-STAT6 يتوسط تكاثر الخلايا والتطور السرطاني عبر تنظيم EGR-1. «بيوكيميكال آند بيوفيزيكال ريسيرتش كوميونيكيشنز»، 2020. 526(2): ص. 287-292.
  6. ماتسون، م.، «التعبير عن Sloppymerase™ في خلايا NIH/3T3: استكشاف تعدد استخدامات بوليميريز اندماجي معرض للخطأ». 2021.
  7. Sahinturk, V.، وآخرون، يُحدث الأكريلاميد سُميته الخلوية في خلايا الأرومة الليفية NIH/3T3 عن طريق موت الخلايا المبرمج. Toxicology and Industrial Health، 2018. 34(7): ص. 481-489.
  8. لوسي، إ. أ. وف. كايتشي، اكتشاف أول فيروس رجعي عملاق بشري: وصف شكله، وكيناز الفيروس الرجعي، وقدرته على إحداث أورام في الفئران. bioRxiv، 2019: ص. 851063.
  9. إندو، م.، وآخرون، تتوسط إشارات E2F1‐Ror2 التنظيم النسخي المنسق لتعزيز الانتقال من مرحلة G1 إلى مرحلة S في الخلايا الليفية NIH/3T3 المحفزة بـ bFGF. مجلة FASEB، 2020. 34(2): ص. 3413-3428.
  10. Long, L.، وآخرون، «نضوب الريبوفلافين يعزز تكوين الأورام في خلايا HEK293T وNIH3T3 من خلال الحفاظ على تكاثر الخلايا وتنظيم النسخ الجيني المرتبط بدورة الخلية». مجلة التغذية، 2018. 148(6): ص. 834-843.

 

لقد اكتشفنا أنك في بلد مختلف أو أنك تستخدم لغة متصفح مختلفة عن اللغة المحددة حاليًا. هل ترغب في قبول الإعدادات المقترحة؟

إغلاق