HEK293-CD20-Zellen
1.900,00 €*
Die Produkte werden tiefgefroren in Trockeneis in Kryoröhrchen versandt. Jedes Kryoröhrchen enthält in der Regel 3 × 10 6 Zellen für adhärente Linien oder 5 × 106 Zellen für Suspensionslinien (Einzelheiten finden Sie im Chargenzertifikat).
Allgemeine Informationen
| Beschreibung | Haftungsausschluss: Die für Zelllinien angegebenen Preise gelten ausschließlich für akademische/gemeinnützige Kunden. Für kommerzielle Einrichtungen beträgt der Preis ca. 6.250 €. HEK293-CD20-Zellen sind menschliche embryonale Nierenzellen 293 (HEK293), die so modifiziert wurden, dass sie stabil humanes CD20 (MS4A1) exprimieren, ein nicht-glykosyliertes Transmembran-Phosphoprotein, das vorwiegend auf B-Lymphozyten exprimiert wird. CD20 ist an der Regulation der B-Zell-Aktivierung, -Proliferation, -Differenzierung und der Kalziumsignalübertragung beteiligt und gilt als eines der am umfassendsten validierten therapeutischen Ziele bei hämatologischen Malignomen und Autoimmunerkrankungen. Stabile HEK293-CD20-Modelle ermöglichen eine kontrollierte und reproduzierbare Oberflächenexpression des Antigens und damit eine detaillierte Charakterisierung von CD20-gerichteten Therapeutika und immunvermittelten Mechanismen. HEK293-CD20-Zellen werden in der Immunonkologie und bei der Entwicklung von Biologika häufig zur Bewertung von monoklonalen Antikörpern, bispezifischen Antikörpern, Antikörper-Wirkstoff-Konjugaten und gentechnisch veränderten Immunzelltherapien eingesetzt, die auf CD20 abzielen. Diese Zellen ermöglichen die quantitative Analyse der Antikörperbindungsaffinität, der Epitopspezifität, der Rezeptorbelegung, der Internalisierungsdynamik sowie Fc-vermittelter Immun-Effektorfunktionen wie der antikörperabhängigen zellulären Zytotoxizität (ADCC) und der komplementabhängigen Zytotoxizität (CDC). Sie werden zudem häufig bei der Entwicklung von Durchflusszytometrie-Assays, Wirksamkeitstests, Reporter-Bioassays und therapeutischen Hochdurchsatz-Screening-Workflows eingesetzt. Da HEK293-Zellen eine effiziente Expression rekombinanter Proteine und ein robustes Zellwachstum ermöglichen, bieten sie eine zuverlässige und skalierbare Plattform für die Erstellung standardisierter Assays und Studien zur Zielvalidierung. |
|---|---|
| Organismus | Menschen |
| Gewebe | Fötale Niere |
| Krankheit | Transformiert/immunisiert; nicht tumorogen (HEK293-Hintergrund) |
| Anwendungen | Entwicklung von CD20-spezifischen Antikörpern und bispezifischen Antikörpern; CAR-T-Zelltherapie; ADCC-/CDC-Assays; Durchflusszytometrie; Wirksamkeitsprüfung von Biologika; Forschung zu B-Zell-Antigenen |
Merkmale
| Alter | Fötus |
|---|---|
| Geschlecht | Weiblich |
| Morphologie | Epithelähnlich |
| Zelltyp | Epithelzellen |
| Wachstumseigenschaften | Monolayer, haftend |
Regulatorische Daten
| Zitat | HEK293-CD20 (Cytion-Katalognummer 305987) |
|---|---|
| Biosicherheitsstufe | 1 |
| NCBI_TaxID | 9606 |
| CellosaurusAccession | CVCL_A8V4 |
| GVO-Status | GMO-S1: Diese HEK293-Zelllinie enthält ein CD20 (MS4A1)-Expressionskonstrukt für Untersuchungen zu therapeutischen Antikörpern und Immun-Effektorfunktionen. Diese Einstufung gilt nur innerhalb Deutschlands und kann in anderen Ländern abweichen. |
Biomolekulare Daten
| Exprimierte Rezeptoren | CD20 |
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Handhabung
| Nährboden | RPMI 1640, w: 2,0 mM stabiles Glutamin, w: 2,0 g/L NaHCO3 (Cytion-Artikelnummer 820700a) |
|---|---|
| Supplemente | Ergänzen Sie das Medium mit 10 % FBS, 1 mM Natriumpyruvat, 10 mM HEPES, 1 % NEAA. Geneticin (G418-Sulfat) hinzufügen, um eine Endkonzentration von 1 mg/ml zu erreichen. |
| Dissoziationsreagenz | Trypsin-EDTA |
| Verdopplungszeit | ca. 24–36 Stunden |
| Subkultivierung | Für die routinemäßige adhärente Zellkultur: Saugen Sie das alte Kulturmedium von den adhärenten Zellen ab und waschen Sie sie mit PBS, um das restliche Medium zu entfernen. Nach dem Absaugen des PBS die entsprechende Menge Trypsin/EDTA-Lösung je nach Größe des Kulturgefäßes zugeben (z. B. 1 ml für einen T25-Kolben, 3 ml für einen T75-Kolben) und bei Raumtemperatur oder 37 °C inkubieren, bis sich die Zellen ablösen (5-10 Minuten). Überwachen Sie die Ablösung unter dem Mikroskop und klopfen Sie bei Bedarf vorsichtig auf das Gefäß, um die Zellen freizusetzen. Sobald sich die Zellen abgelöst haben, fügen Sie vollständiges Medium hinzu, um das Trypsin/EDTA zu inaktivieren, resuspendieren Sie die Zellen vorsichtig und transferieren Sie einen aliquoten Teil der Zellsuspension in ein neues Kulturgefäß mit frischem Medium. Stellen Sie das Gefäß in einen auf 37°C und 5%CO2 eingestellten Inkubator und wechseln Sie das Medium alle 2-3 Tage. |
| Splitverhältnis | 1 bis 5 |
| Aussaatdichte | 2 bis 4 x 104 Zellen/cm2 |
| Medienwechsel | 2 bis 3 Mal pro Woche |
| Erholung nach dem Tauwetter | Nach dem Auftauen die Zellen im Verhältnis 1:2 bis 1:3 in T25-Kolben aufteilen und die Zellen mindestens 24 Stunden lang vom Gefrierprozess erholen und anhaften lassen (bei adhärenten Kulturen). |
| Einfriermedium | Als Kryokonservierungsmedium verwenden wir komplettes Wachstumsmedium (einschließlich FBS) + 10 % DMSO für eine angemessene Lebensfähigkeit nach dem Auftauen oder CM-1 (Cytion Katalognummer 800100), das optimierte Osmoprotektoren und Stoffwechselstabilisatoren enthält, um die Erholung zu verbessern und kryoinduzierten Stress zu reduzieren. |
| Auftauen und Kultivierung von Zellen |
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| Inkubationsatmosphäre | 37°C, 5%CO2, befeuchtete Atmosphäre. |
| Versandbedingungen | Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager. |
| Lagerungsbedingungen | Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel. |
Qualitätskontrolle / Genetisches Profil / HLA
| Sterilität | Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen. Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft. |
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