CHO-CD20-Zellen
1.900,00 €*
Die Produkte werden tiefgefroren in Trockeneis in Kryoröhrchen versandt. Jedes Kryoröhrchen enthält in der Regel 3 × 10 6 Zellen für adhärente Linien oder 5 × 106 Zellen für Suspensionslinien (Einzelheiten finden Sie im Chargenzertifikat).
Allgemeine Informationen
| Beschreibung | Haftungsausschluss: Die für Zelllinien angegebenen Preise gelten ausschließlich für akademische/gemeinnützige Kunden. Für gewerbliche Kunden beträgt der Preis ca. 6.250 €. CHO-CD20-Zellen sind rekombinante Chinese-Hamster-Ovarialzellen (CHO-Zellen), die so verändert wurden, dass sie stabil humanes CD20 (MS4A1) exprimieren, ein nicht-glykosyliertes Transmembran-Phosphoprotein, das vorwiegend auf der Oberfläche von B-Lymphozyten zu finden ist. CD20 spielt eine Rolle bei der B-Zell-Aktivierung, Proliferation, Kalzium-Signalübertragung und Differenzierung und gilt weithin als wichtiges therapeutisches Ziel bei B-Zell-Malignomen wie Non-Hodgkin-Lymphomen, chronischer lymphatischer Leukämie und bestimmten Autoimmunerkrankungen. Stabile CHO-CD20-Modelle ermöglichen eine kontrollierte und reproduzierbare Antigenexpression für die In-vitro-Charakterisierung von CD20-gerichteten Therapeutika und Immun-Effektormechanismen. CHO-CD20-Zellen werden in großem Umfang bei der Entwicklung und Bewertung von monoklonalen Antikörpern, Antikörper-Wirkstoff-Konjugaten, bispezifischen Antikörpern und gentechnisch veränderten Immunzelltherapien gegen CD20 eingesetzt. Diese Zellen ermöglichen die quantitative Analyse der Antikörperbindungsaffinität, der Rezeptorbelegung, des Internalisierungsverhaltens, der komplementabhängigen Zytotoxizität (CDC), der antikörperabhängigen zellulären Zytotoxizität (ADCC) und der Fc-vermittelten Immunaktivierung. Sie finden zudem breite Anwendung bei der Entwicklung von Durchflusszytometrie-Assays, der Epitopkartierung, Wirksamkeitstests und Hochdurchsatz-Screening-Workflows. Da CHO-Zellen robuste Wachstumseigenschaften und eine begrenzte endogene Expression humaner Immunantigene aufweisen, bieten sie einen konsistenten Hintergrund für die Expression rekombinanter CD20-Proteine und die Standardisierung von Assays. |
|---|---|
| Organismus | Chinesischer Hamster |
| Gewebe | Eierstock |
| Krankheit | Ovarialzellen des chinesischen Hamsters, nicht-neoplastisch; gentechnisch verändert zur Expression von CD20 (MS4A1) auf der Zelloberfläche |
| Anwendungen | Antikörperscreening; ADCC-/CDC-Assays; Entwicklung von Anti-CD20-Therapien; Forschung zu B-Zell-Malignomen; Durchflusszytometrie |
Merkmale
| Alter | Erwachsener |
|---|---|
| Geschlecht | Weiblich |
| Morphologie | Epithelähnlich |
| Zelltyp | Epithelzelle des Eierstocks |
| Wachstumseigenschaften | Adhärent/Suspension |
Regulatorische Daten
| Zitat | CHO-CD20 (Cytion-Katalognummer 305976) |
|---|---|
| Biosicherheitsstufe | 1 |
| NCBI_TaxID | 10029 |
| CellosaurusAccession | CVCL_A8V4 |
| GVO-Status | GMO-S1: Diese CHO-Zelllinie enthält eine CD20-Expressionskassette, die Analysen der Rezeptorfunktion ermöglicht. Diese Einstufung gilt nur in Deutschland und kann in anderen Ländern abweichen. |
Biomolekulare Daten
| Exprimierte Rezeptoren | CD20 |
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Handhabung
| Nährboden | Für adhärente Kulturen: DMEM:Ham's F12 (1:1), w: 3,1 g/L Glucose, w: 2,5 mM L-Glutamin, w: 15 mM HEPES, w: 0,5 mM Natriumpyruvat, w: 1,2 g/L NaHCO3 (Cytion-Artikelnummer 820400a) Für Suspensionskulturen: CHO-Wachstumsmedium A (von InSCREENeX; InSCREENeX-Katalognummer INS-ME-1039) |
|---|---|
| Supplemente | Für adhärente Kulturen: Ergänzen Sie das Medium mit 5% FBS. Geneticin (G418-Sulfat) hinzufügen, um eine Endkonzentration von 0,5 mg/ml zu erreichen. |
| Dissoziationsreagenz | Für adhärente Kulturen: Trypsin-EDTA |
| Verdopplungszeit | ca. 14–16 Stunden |
| Subkultivierung | Für die routinemäßige adhärente Zellkultur: Saugen Sie das alte Kulturmedium von den adhärenten Zellen ab und waschen Sie sie mit PBS, um das restliche Medium zu entfernen. Nach dem Absaugen des PBS die entsprechende Menge Trypsin/EDTA-Lösung je nach Größe des Kulturgefäßes zugeben (z. B. 1 ml für einen T25-Kolben, 3 ml für einen T75-Kolben) und bei Raumtemperatur oder 37 °C 5-10 Minuten lang inkubieren, oder bis sich die Zellen ablösen. Überwachen Sie die Ablösung unter dem Mikroskop und klopfen Sie bei Bedarf vorsichtig auf das Gefäß, um die Zellen freizusetzen. Sobald sich die Zellen abgelöst haben, fügen Sie vollständiges Medium hinzu, um das Trypsin/EDTA zu inaktivieren, resuspendieren Sie die Zellen vorsichtig und transferieren Sie einen aliquoten Teil der Zellsuspension in ein neues Kulturgefäß mit frischem Medium. Stellen Sie das Gefäß in einen auf 37°C und 5%CO2 eingestellten Inkubator und wechseln Sie das Medium alle 2-3 Tage. |
| Splitverhältnis | 1 bis 5 |
| Aussaatdichte | 2 bis 5 x 104 Zellen/cm2 |
| Medienwechsel | 2 bis 3 Mal pro Woche |
| Erholung nach dem Tauwetter | Nach dem Auftauen die Zellen im Verhältnis 1:2 bis 1:3 in T25-Kolben aufteilen und die Zellen mindestens 24 Stunden lang vom Gefrierprozess erholen und anhaften lassen (bei adhärenten Kulturen). |
| Einfriermedium | Als Kryokonservierungsmedium verwenden wir komplettes Wachstumsmedium (einschließlich FBS) + 10 % DMSO für eine angemessene Lebensfähigkeit nach dem Auftauen oder CM-1 (Cytion Katalognummer 800100), das optimierte Osmoprotektoren und Stoffwechselstabilisatoren enthält, um die Erholung zu verbessern und kryoinduzierten Stress zu reduzieren. |
| Auftauen und Kultivierung von Zellen |
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| Inkubationsatmosphäre | 37°C, 5%CO2, befeuchtete Atmosphäre. |
| Versandbedingungen | Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager. |
| Lagerungsbedingungen | Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel. |
Qualitätskontrolle / Genetisches Profil / HLA
| Sterilität | Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen. Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft. |
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