HNO41-celler
800,00 €*
Produkterne leveres frosne på tøris i kryorør. Hvert kryorør indeholder typisk 3 × 10 6 celler til adhærente linjer eller 5 × 106 celler til suspensionslinjer (se batch-COA for detaljer).
Generel information
| Beskrivelse | HNO41-cellelinjen stammer fra et hypofaryngealt pladecellekarcinom, en type pladecellekarcinom i hoved og hals (HNSCC). Denne cellelinje er karakteriseret ved adskillige kromosomafvigelser, herunder DNA-kopiantalforøgelser i kromosomregioner som 3q23-qter, 5p, 7p, 7q21-q22, 8q22.2-qter, 9q22-qter og 11q13. Disse regioner er kendt for at rumme onkogener, der bidrager til tumorprogression, hvilket gør HNO41 til en værdifuld model til undersøgelse af de molekylære mekanismer, der ligger til grund for hypofaryngeal cancer. Ud over sin genetiske profil er HNO41 blevet analyseret for sit udtryk af angiogene vækstfaktorer, som er afgørende for tumorudvikling og metastase. Cellelinjen udviser et stærkt udtryk for bl.a. vaskulær endotelial vækstfaktor (VEGF) og blodpladeafledt vækstfaktor (PDGF). Disse faktorer er involveret i at fremme angiogenese, dannelsen af nye blodkar, som er en nøgleproces i tumorvækst og metastase. Tilstedeværelsen af disse faktorer i HNO41 understøtter yderligere dets anvendelighed i forskning med fokus på at forstå tumorangiogenese og i evaluering af anti-angiogenetiske terapier til HNSCC. |
|---|---|
| Organisme | Menneske |
| Væv | Tonsil |
| Sygdom | Pladecellekarcinom i hoved og hals (HNSCC) |
Karakteristika
| Alder | 52 år |
|---|---|
| Køn | Mand |
| Etnicitet | Kaukasisk |
| Morfologi | Epitel-lignende |
| Vækstegenskaber | Monolag, klæbende |
Regulatoriske data
| Citat | HNO41 (Cytion katalognummer 300126) |
|---|---|
| Biosikkerhedsniveau | 1 |
| NCBI_TaxID | 9606 |
| CellosaurusAccession | CVCL_D224 |
Biomolekylære data
Håndtering
| Kulturmedium | DMEM, w: 4,5 g/L glukose, w: 4 mM L-glutamin, w: 3,7 g/L NaHCO3, w: 1,0 mM natriumpyruvat (Cytion artikelnummer 820300a) |
|---|---|
| Kosttilskud | Suppler mediet med 10% FBS |
| Dissociationsreagens | Accutase |
| Subkulturer | Fjern det gamle medium fra de klæbende celler, og vask dem med PBS, der ikke indeholder calcium og magnesium. Brug 3-5 ml PBS til T25-kolber og 5-10 ml til T75-kolber. Dæk derefter cellerne helt med Accutase, brug 1-2 ml til T25-kolber og 2,5 ml til T75-kolber. Lad cellerne inkubere ved stuetemperatur i 8-10 minutter for at løsne dem. Efter inkubationen blandes cellerne forsigtigt med 10 ml medium for at resuspendere dem, og centrifugeres derefter ved 300xg i 3 minutter. Kassér supernatanten, resuspender cellerne i frisk medium, og overfør dem til nye kolber, der allerede indeholder frisk medium. |
| Fornyelse af væske | 2 til 3 gange om ugen |
| Frys medium | Som kryopræserveringsmedium bruger vi komplet vækstmedium (inklusive FBS) + 10 % DMSO for tilstrækkelig levedygtighed efter optøning eller CM-1 (Cytion-katalognummer 800100), som indeholder optimerede osmobeskyttende stoffer og metaboliske stabilisatorer for at forbedre genopretningen og reducere kryo-induceret stress. |
| Optøning og dyrkning af celler |
|
| Inkubationsatmosfære | 37°C, 5%CO2, befugtet atmosfære. |
| Overfladebehandling af flasker | Ingen |
| Fryseprocedure | Kryopræserverede cellelinjer sendes på tøris i valideret, isoleret emballage med tilstrækkeligt kølemiddel til at opretholde ca. -78 °C under hele transporten. Ved modtagelse skal beholderen straks inspiceres, og hætteglassene skal straks overføres til passende opbevaring. |
| Forsendelsesbetingelser | Kryopræserverede cellelinjer sendes på tøris i valideret, isoleret emballage med tilstrækkeligt kølemiddel til at opretholde ca. -78 °C under hele transporten. Ved modtagelse skal beholderen straks inspiceres, og hætteglassene skal straks overføres til passende opbevaring. |
| Opbevaringsforhold | For langtidsopbevaring anbringes hætteglas i flydende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Opbevaring ved -80 °C er kun acceptabelt som et kort mellemtrin før overførsel til flydende nitrogen. |
Kvalitetskontrol / Genetisk profil / HLA
| Sterilitet | Mycoplasma-kontaminering udelukkes ved hjælp af både PCR-baserede assays og luminescensbaserede mycoplasma-detektionsmetoder. For at sikre, at der ikke er nogen bakterie-, svampe- eller gærforurening, underkastes cellekulturerne daglige visuelle inspektioner. |
|---|