TT-Zellen
Allgemeine Informationen
Beschreibung | Es wurde festgestellt, dass TT-Zellen kontinuierlich hohe Mengen an Calcitonin und CEA produzieren. 24 bzw. 72 Stunden nach einem Mediumwechsel wurde immunreaktives Calcitonin in einer Konzentration von 3900 pg/Millionen Zellen bzw. 7700 pg/Millionen Zellen produziert.CEA akkumuliert sich über einen Zeitraum von 72 Stunden auf mehr als 27 ng/Millionen Zellen.Chromosomenanalysen der Zelllinie und der in Nacktmäusen induzierten Tumore zeigen einen aneuploiden menschlichen Karyotyp mit mehreren Markerchromosomen.Die ersten Studien zur Charakterisierung der TT-Zelllinie wurden mit TT-Zellen der ersten Passage durchgeführt, die in RPMI-1640-Medium kultiviert wurden, das mit 15 % fötalem Rinderserum und 1 mM L-Glutamin ergänzt wurde.Es ist nicht bekannt, ob die Neuropeptide, von denen berichtet wurde, dass sie von dieser Zelllinie produziert werden, wenn sie in RPMI 1640-Medium kultiviert wurde, auch von den Zellen produziert werden, wenn sie in Ham's F-12K-Medium kultiviert werden.Die Chromosomenanalyse der Zelllinie und der in Nacktmäusen induzierten Tumore zeigt einen aneuploiden menschlichen Karyotyp mit mehreren Markerchromosomen. |
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Organismus | Menschen |
Gewebe | Schilddrüse, Medulla |
Krankheit | Hereditäres medulläres Schilddrüsenkarzinom, Multiple endokrine Neoplasie Typ 2 |
Synonyme | MTC-TT |
Merkmale
Alter | 77 Jahre |
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Geschlecht | Weiblich |
Ethnizität | Europäisch |
Morphologie | Epithelial |
Wachstumseigenschaften | Adhärent |
Identifikatoren / Biologische Schutzstufe / Zitation
Zitat | TT (Cytion Katalognummer 305027) |
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Biosicherheitsstufe | 1 |
Expression / Mutation
Proteinexpression | Calcitonin, karzinoembryonales Antigen (CEA) |
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Tumorigene | Ja |
Handhabung
Nährboden | Ham's F12K Medium, w: 2,0 mM L-Glutamin, w: 2,0 mM Natriumpyruvat, w: 2,5 g/L NaHCO3 (Cytion-Artikelnummer 820608a) |
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Mittlere Supplemente | Supplemente des Mediums mit 10% FBS |
Passage-Lösung | Accutase |
Subkultivierung | Entfernen Sie das alte Medium von den adhärenten Zellen und waschen Sie sie mit PBS, das kein Kalzium und Magnesium enthält. Für T25-Kolben 3-5 ml PBS und für T75-Kolben 5-10 ml verwenden. Anschließend werden die Zellen vollständig mit Accutase bedeckt, wobei 1-2 ml für T25-Kolben und 2,5 ml für T75-Kolben verwendet werden. Lassen Sie die Zellen 8-10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren, um sie abzulösen. Nach der Inkubation mischen Sie die Zellen vorsichtig mit 10 ml Medium, um sie zu resuspendieren, und zentrifugieren sie dann 3 Minuten lang bei 300xg. Den Überstand verwerfen, die Zellen in frischem Medium resuspendieren und in neue Kolben überführen, die bereits frisches Medium enthalten. |
Splitverhältnis | 1:2 bis 1:4 |
Medienwechsel | 2 bis 3 Mal pro Woche |
Einfriermedium | CM-1 (Cytion Katalognummer 800100) oder CM-ACF (Cytion Katalognummer 806100) |
Handhabung von kryokonservierten Kulturen |
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Qualitätskontrolle / Genetisches Profil / HLA
Sterilität | Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen. Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft. |
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STR profile |
Amelogenin: x,x
CSF1PO: 10,13
D13S317: 11
D16S539: 12,13
D5S818: 12,13
D7S820: 10,12
TH01: 6,9
TPOX: 8,11
vWA: 16,18
D3S1358: 15
D21S11: 29,32.2
D18S51: 12
Penta E: 7,13
Penta D: 13,13
D8S1179: 15,16
FGA: 21,25
D6S1043: 12,13
D2S1338: 17,23
D12S391: 15,21
D19S433: 14,15
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