Mv.1.Lu-Zellen

Name: CLS Cell Lines Service GmbH
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Produktnummer: 305192

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Product sheet

Beschreibung	Die Zelllinie Mv.1.Lu, auch bekannt als CCL 64, stammt aus dem Lungengewebe eines fötalen Nerzes (Mustela vison). Es handelt sich um eine epithelähnliche Zelllinie, die für ihr flaches, kontaktinhibiertes Wachstum in Monolayerkulturen bekannt ist und eine regelmäßige polygonale Morphologie aufweist. Diese Zelllinie wird aufgrund ihrer breiten Permissivität für verschiedene Säugetierviren des Typs C, einschließlich muriner und feliner Sarkomviren, häufig in virologischen Studien eingesetzt, was sie zu einem bevorzugten System für Fokusbildungsassays und virale Transformationsstudien macht. Die Fähigkeit dieser Zelllinie, die Virusreplikation und -transformation zu unterstützen, hat sie zu einem unverzichtbaren Instrument für das Verständnis der viralen Pathogenese und der Wirt-Pathogen-Interaktionen gemacht. Mv.1.Lu-Zellen werden auch in der Forschung zur Lungenphysiologie eingesetzt, da sie aus Lungengewebe stammen. Studien zu ihren Wachstumseigenschaften, einschließlich ihrer Reaktion auf verschiedene Medien und Kulturbedingungen, haben ihre Anpassungsfähigkeit und Stabilität in Laborumgebungen unterstrichen.
Organismus	Neovison vison (Amerikanischer Nerz)
Gewebe	Lunge
Synonyme	Mv 1 Lu (NBL-7), NBL-7, Mv 1 Lu, MV 1 LU, Mv1.Lu, Mv.1.Lu, MV-1-Lu, Mink, Mink Lung

Alter	Fötus im Frühstadium
Geschlecht	Gemischtes Geschlecht
Morphologie	Epithelial
Wachstumseigenschaften	Adhärent

Zitat	Mv.1.Lu (Cytion Katalognummer 305192)
Biosicherheitsstufe	1

Nährboden	EMEM (MEM Eagle), w: 2 mM L-Glutamin, w: 2,2 g/L NaHCO3, w: EBSS (Cytion-Artikelnummer 820100a)
Mittlere Supplemente	Ergänzen Sie das Medium mit 10% FBS und 1% NEAA
Passage-Lösung	Accutase
Subkultivierung	Entfernen Sie das alte Medium von den adhärenten Zellen und waschen Sie sie mit PBS, das kein Kalzium und Magnesium enthält. Für T25-Kolben 3-5 ml PBS und für T75-Kolben 5-10 ml verwenden. Anschließend werden die Zellen vollständig mit Accutase bedeckt, wobei 1-2 ml für T25-Kolben und 2,5 ml für T75-Kolben verwendet werden. Lassen Sie die Zellen 8-10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren, um sie abzulösen. Nach der Inkubation mischen Sie die Zellen vorsichtig mit 10 ml Medium, um sie zu resuspendieren, und zentrifugieren sie dann 3 Minuten lang bei 300xg. Den Überstand verwerfen, die Zellen in frischem Medium resuspendieren und in neue Kolben überführen, die bereits frisches Medium enthalten.
Splitverhältnis	1:2 bis 1:4
Medienwechsel	2 bis 3 Mal pro Woche
Einfriermedium	Verwenden Sie als Kryokonservierungsmedium ein komplettes Wachstumsmedium (einschließlich FBS) + 10 % DMSO für eine angemessene Lebensfähigkeit nach dem Auftauen oder CM-1 (Cytion-Katalognummer 800100), das optimierte Osmoprotektoren und Stoffwechselstabilisatoren enthält, um die Erholung zu verbessern und kryoinduzierten Stress zu reduzieren.
Handhabung von kryokonservierten Kulturen	Vergewissern Sie sich, dass das Fläschchen bei der Lieferung tiefgefroren ist, da die Zellen auf Trockeneis versandt werden, um während des Transports optimale Temperaturen zu erhalten. Lagern Sie das Kryofläschchen nach Erhalt entweder sofort bei Temperaturen unter -150 °C, um die Unversehrtheit der Zellen zu gewährleisten, oder fahren Sie mit Schritt 3 fort, wenn eine sofortige Kultivierung erforderlich ist. Für eine sofortige Kultivierung tauen Sie das Fläschchen schnell auf, indem Sie es in ein 37°C warmes Wasserbad mit sauberem Wasser und einem antimikrobiellen Mittel eintauchen und 40-60 Sekunden lang vorsichtig schütteln, bis ein kleiner Eisklumpen zurückbleibt. Führen Sie alle weiteren Schritte unter sterilen Bedingungen in einer Abzugshaube durch und desinfizieren Sie das Kryo-Fläschchen vor dem Öffnen mit 70%igem Ethanol. Das desinfizierte Fläschchen vorsichtig öffnen und die Zellsuspension unter vorsichtigem Mischen in ein 15-ml-Zentrifugenröhrchen mit 8 ml Kulturmedium bei Raumtemperatur überführen. Zentrifugieren Sie das Gemisch 3 Minuten lang bei 300 x g, um die Zellen abzutrennen, und verwerfen Sie den Überstand mit dem restlichen Gefriermedium vorsichtig. Das Zellpellet vorsichtig in 10 ml frischem Kulturmedium resuspendieren. Bei adhärenten Zellen die Suspension auf zwei T25-Kulturflaschen aufteilen; bei Suspensionskulturen das gesamte Medium in eine T25-Flasche überführen, um eine effektive Zellinteraktion und ein effektives Wachstum zu fördern. Halten Sie sich an die festgelegten Subkulturprotokolle, um ein kontinuierliches Wachstum und die Aufrechterhaltung der Zelllinie zu gewährleisten und zuverlässige Versuchsergebnisse zu erzielen.

Sterilität	Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen. Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft.

Mv.1.Lu-Zellen

Allgemeine Informationen

Merkmale

Identifikatoren / Biologische Schutzstufe / Zitation

Expression / Mutation

Handhabung

Qualitätskontrolle / Genetisches Profil / HLA