Cellules CHO-CTLA4
3 100,00 CAD$*
Les produits sont expédiés congelés, dans de la glace carbonique, à l'intérieur de cryotubes. Chaque cryotube contient généralement 3 × 10⁶ cellules pour les lignées adhérentes ou 5 × 10⁶ cellules pour les lignées en suspension (voir le certificat d'analyse du lot pour plus de détails).
Renseignements généraux
| Description | Avertissement : Les prix indiqués pour les lignées cellulaires s’adressent exclusivement aux clients du milieu universitaire ou à but non lucratif. Pour les entités commerciales, le prix est d’environ 6 250 €. La lignée cellulaire CHO-CTLA4 est une lignée cellulaire CHO (ovaires de hamster chinois) recombinante stable, conçue pour exprimer le récepteur CTLA4 à un niveau moyen-faible, soit environ 3 000 molécules par cellule. Cette lignée cellulaire a été créée à l’aide d’une technologie innovante de « landing pad » qui facilite l’intégration ciblée du gène CTLA4 à un locus génomique spécifique et prévalidé. Le CTLA4, également connu sous le nom de CD152, est une protéine clé du point de contrôle immunitaire que l’on retrouve principalement sur les cellules T. Elle agit en entrant en compétition avec le CD28 pour se lier aux molécules B7 (CD80 et CD86) présentes sur les cellules présentatrices d’antigènes, ce qui entraîne une régulation à la baisse de l’activation des cellules T. Ce mécanisme est essentiel au maintien de l’autotolérance immunitaire et à la prévention de l’auto-immunité. Le rôle du CTLA4 dans la modulation des réponses immunitaires en a fait une cible importante en immunothérapie du cancer, en particulier dans les stratégies de blocage des points de contrôle immunitaires. L’expression de CXCR7 dans cette lignée cellulaire a été confirmée par cytométrie en flux. |
|---|---|
| Organisme | Hamster chinois |
| Tissu | Ovaire |
| Maladie | Ovaires de hamster chinois, non néoplasiques; modifiés génétiquement pour l'expression de CTLA-4 en surface |
| Applications | Criblage d’anticorps; développement d’une immunothérapie ciblant le CTLA-4; recherche sur les inhibiteurs de points de contrôle; cytométrie en flux; découverte de médicaments |
Caractéristiques
| Âge | Adulte |
|---|---|
| Genre | Femme |
| Morphologie | De type épithélial |
| Type de cellule | Cellules épithéliales |
| Propriétés de croissance | Adhérent/en suspension |
Données réglementaires
| Référence | CHO-CTLA4 (numéro de catalogue Cytion 305414) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 10029 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_A8V8 |
| Statut OGM | GMO-S1 : Ce dérivé de la lignée CHO contient une construction d'expression du gène CTLA-4 permettant la réalisation d'études sur les récepteurs de points de contrôle. Cette classification ne s'applique qu'en Allemagne et peut varier dans d'autres pays. |
Données biomoléculaires
| Récepteurs exprimés | CTLA4 (CD152) |
|---|
Manipulation
| Milieu de culture | Pour les cultures adhérentes : DMEM : Ham’s F12 (1:1), p/v : 3,1 g/L de glucose, p/v : 2,5 mM de L-glutamine, p/v : 15 mM d’HEPES, 0,5 mM de pyruvate de sodium, 1,2 g/L de NaHCO₃ (référence Cytion 820400a) Pour les cultures en suspension : milieu de croissance CHO A (de InSCREENeX; numéro de catalogue InSCREENeX INS-ME-1039) |
|---|---|
| Suppléments | Pour les cultures adhérentes : compléter le milieu avec 5 % de FBS. Ajouter du Geneticin (G418-Sulfat) afin d’obtenir une concentration finale de 0,5 mg/mL. |
| Réactif de dissociation | Pour les cultures adhérentes : trypsine-EDTA |
| Temps de doublement | environ 14 à 16 heures |
| Repiquage | Pour une culture cellulaire adhérente de routine : Aspirez l’ancien milieu de culture des cellules adhérentes, puis lavez-les avec du PBS afin d’éliminer tout résidu de milieu. Après avoir aspiré le PBS, ajoutez le volume approprié de solution de trypsine/EDTA en fonction de la taille du récipient de culture (p. ex., 1 ml pour un flacon T25, 3 ml pour un flacon T75) et incubez à température ambiante ou à 37 °C pendant 5 à 10 minutes, ou jusqu’à ce que les cellules se détachent. Surveillez le détachement au microscope et tapotez doucement le récipient si nécessaire pour libérer les cellules. Une fois les cellules détachées, ajoutez du milieu complet pour inactiver la trypsine/EDTA, remettez délicatement les cellules en suspension, puis transférez une aliquote de la suspension cellulaire dans un nouveau récipient de culture contenant du milieu frais. Placez le récipient dans un incubateur réglé à 37 °C avec 5 % de CO₂, et changez le milieu tous les 2 à 3 jours. |
| Rapport de fractionnement | 1 à 5 |
| Densité de semis | de 2 à 5 × 10⁴ cellules/cm² |
| Renouvellement des fluides | 2 à 3 fois par semaine |
| Rétablissement après le dégel | Après la décongélation, divisez les cellules dans un rapport de 1:2 à 1:3 dans des flacons T25 et laissez-les se remettre du processus de congélation et adhérer (pour les cultures adhérentes) pendant au moins 24 heures. |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (contenant du sérum fœtal bovin) + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation, ou du CM-1 (référence Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
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| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
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