Cellules MC3T3-E1 — Le modèle de référence des préostéoblastes pour la recherche en biologie osseuse

Introduction

Cellules MC3T3-E1, également connues sous les synonymes Mc3T3-E1, MC3T3E1, MC-3T3-E1 et MC 3T3-E1 (numéro d’accès Cellosaurus CVCL_0409), constituent l’une des lignées cellulaires préostéoblastiques les plus largement utilisées en biologie osseuse moderne. Isolées à partir du crâne de souris nouveau-nées par Kodama et ses collègues en 1981, puis caractérisées plus en détail par Sudo et al. en 1983, ces cellules immortalisées spontanément ont été sélectionnées pour leur forte activité de phosphatase alcaline (ALP) à l’état confluent. [1] Leur capacité à franchir des étapes de prolifération et de différenciation bien définies — pour finalement former une matrice osseuse minéralisée in vitro — en a fait un outil indispensable pour l’étude de l’ostéogenèse, du remodelage osseux et des effets des agents pharmacologiques, des biomatériaux et des perturbations génétiques sur la fonction ostéoblastique. Aujourd’hui, les cellules MC3T3-E1 occupent une place prépondérante dans la recherche portant sur l’ostéoporose, la science des implants, l’ingénierie tissulaire et la biologie spatiale.

Points à retenir

• MC3T3-E1 est une lignée cellulaire murine de préostéoblastes immortalisée spontanément, dérivée du crâne d’une souris nouveau-née.
• Les cellules passent par différentes étapes de prolifération et de différenciation, qui aboutissent à la formation d'une matrice minéralisée in vitro.
• Une activité élevée de l'ALP et l'expression de marqueurs ostéoblastiques (RUNX2, OCN, OPN, Col1A1) en font un modèle fiable d'ostéogenèse.
• Plusieurs sous-clones dérivés, présentant des potentiels de différenciation et de minéralisation variables, ont été établis à partir de la lignée parentale.
• Les cellules MC3T3-E1 sont largement utilisées dans les essais de biomatériaux, la découverte de médicaments, la recherche sur l’ostéoporose et l’ingénierie tissulaire osseuse.
• L'identité des lignées cellulaires doit être vérifiée systématiquement au moyen d'un profilage STR ou SNP afin d'éviter toute erreur d'identification et toute contamination croisée. [2]

Qu'est-ce que le MC3T3-E1?

MC3T3-E1 est une lignée cellulaire clonale de préostéoblastes d’origine murine, immortalisée spontanément, portant le numéro d’accès Cellosaurus CVCL_0409. Elle a été dérivée du tissu osseux du crâne d’une souris nouveau-née (âgée de moins d’un jour) dont le sexe n’a pas été précisé. Aucune maladie n’était associée à l’animal donneur. La lignée cellulaire a été sélectionnée en raison de sa forte activité de l’ALP à l’état confluent, une propriété qui laissait présager de sa solide capacité d’ostéogenèse in vitro. En phase de croissance, les cellules MC3T3-E1 présentent une morphologie fibroblastique et forment des cultures multicouches. Lors de l’induction, elles se différencient en ostéoblastes, produisent une matrice extracellulaire collagèneuse et donnent finalement naissance à des nodules minéralisés contenant des cellules de type ostéocytes intégrées dans la matrice osseuse. [1] Le temps de doublement varie entre 24 et 48 heures dans des conditions de culture standard.

Le profilage par micropuces SNP a confirmé que les cellules MC3T3-E1 provenaient de la souche C57BL/6 et a permis d’identifier les modifications caryotypiques associées aux repiquages à long terme. [3] Cette lignée exprime des marqueurs clés des ostéoblastes, notamment RUNX2, la sialoprotéine osseuse, l’ostéocalcine et l’ostéopontine, en particulier dans les sous-clones en cours de minéralisation. [4] Une série de sous-clones dérivés — notamment Sous-clone 14 de MC3T3-E1 Les cellules — ainsi que le sous-clone 4 — ont été isolées à partir de la lignée parentale et présentent des degrés variables de différenciation et de potentiel de minéralisation in vitro et in vivo.

Renseignements sur la culture cellulaire

MC3T3-E1 – haute confluence

Avantages des cellules MC3T3-E1

Les cellules MC3T3-E1 constituent un modèle bien défini et reproductible de l’ensemble du processus de développement des ostéoblastes. Contrairement aux ostéoblastes primaires du crâne, qui sont hétérogènes et difficiles à cultiver, les cellules MC3T3-E1 sont d’origine clonale et peuvent être multipliées de manière constante d’un laboratoire à l’autre. Leur capacité à passer du stade de préostéoblastes proliférants à celui d’ostéoblastes déposant de la matrice, puis finalement à celui de nodules minéralisés contenant des ostéocytes, les rend particulièrement adaptées aux études temporelles de l’ostéogenèse. Les travaux pionniers de Yohay et al. ont permis de définir les stades distincts de prolifération et de différenciation des cellules MC3T3-E1 en culture, les établissant ainsi comme un modèle in vitro quantitatif du développement des ostéoblastes. [5] Cette étude a démontré que les cellules MC3T3-E1 suivent une séquence prévisible d’arrêt de croissance, de maturation de la matrice et de minéralisation — des étapes qui reflètent fidèlement l’ontogenèse des ostéoblastes in vivo.

Un autre avantage réside dans la disponibilité de sous-clones bien caractérisés qui offrent une grande souplesse expérimentale. Wang et al. ont isolé une série de sous-clones à partir de la lignée parentale MC3T3-E1, démontrant que les sous-clones minéralisants expriment de manière sélective la sialoprotéine osseuse, l’ostéocalcine, et les ARNm du récepteur de la PTH/PTHrP, tandis que l’expression de la phosphatase alcaline était observée tant dans les sous-clones minéralisants que dans les sous-clones non minéralisants. [4] Cette ressource permet aux chercheurs de sélectionner des sous-clones présentant des phénotypes bien définis et adaptés à leurs besoins expérimentaux. De plus, ces cellules réagissent vigoureusement à un large éventail de stimuli ostéogéniques — notamment l’acide ascorbique, le bêta-glycérophosphate, le BMP-2, la dexaméthasone et de nombreuses petites molécules —, ce qui les rend idéales pour les études pharmacologiques et mécanistiques.

Les cellules MC3T3-E1 se prêtent également très bien à la manipulation moléculaire. Elles tolèrent la transfection, la transduction virale et l’édition génétique par CRISPR, et elles expriment des voies de signalisation endogènes (Wnt/β-caténine, BMP/SMAD, PI3K/AKT) qui sont directement liées à la physiopathologie osseuse. Leur origine murine facilite leur intégration dans des modèles murins in vivo d’ostéoporose et de guérison des fractures, ce qui renforce la valeur translationnelle des résultats obtenus in vitro.

Limites des cellules MC3T3-E1

Malgré leur utilisation généralisée, les cellules MC3T3-E1 présentent des limites importantes. En tant que lignée immortalisée spontanément, elles peuvent accumuler des anomalies caryotypiques au fil de passages prolongés. Le profilage par micropuce à SNP a révélé une aneuploïdie généralisée dans les cultures de MC3T3-E1, et des modifications à l’échelle du génome pourraient affecter la reproductibilité des essais de différenciation à des nombres de passages élevés. [3] La lignée parentale d’origine peut également subir une perte spontanée de sa capacité de minéralisation, comme l’a démontré Baba, qui a isolé un sous-clone non minéralisant (MC3T3-NM4) à partir de la population parentale MC3T3-E1 — une découverte qui souligne la nécessité d’une surveillance attentive de la capacité de différenciation au fil des passages. [6]

La performance ostéogénique variable des sous-clones MC3T3-E1 disponibles dans le commerce constitue une source supplémentaire de variabilité expérimentale. Des recherches ont montré que différents sous-clones (p. ex., le sous-clone 4 par rapport au sous-clone 14) présentent une cinétique de minéralisation et des profils d’expression des gènes marqueurs nettement différents; il faut donc faire preuve de prudence lors de la comparaison directe des résultats entre des laboratoires utilisant des sous-clones différents. La composition du milieu de culture influence également de manière significative les résultats ostéogéniques : des études évaluant les cellules MC3T3-E1 dans différents milieux de culture ont rapporté des différences substantielles au niveau de l’activité de la phosphatase alcaline (ALP), du dépôt de collagène et de la calcification — ce qui souligne l’importance de la normalisation du milieu dans la conception expérimentale.

Enfin, les cellules MC3T3-E1 sont d’origine murine, ce qui limite leur pertinence translationnelle directe pour prédire les réponses des ostéoblastes humains. Les différences spécifiques à l’espèce en matière de pharmacologie des récepteurs, de signalisation des cytokines et de régulation génique impliquent que les résultats doivent être validés dans des systèmes d’ostéoblastes humains avant toute extrapolation clinique. Il est fortement recommandé de procéder à une authentification systématique des lignées cellulaires par profilage STR ou par des méthodes fondées sur le séquençage de nouvelle génération afin d’exclure toute contamination croisée avant de commencer les expériences. [2]

Applications

Modélisation de la différenciation des ostéoblastes et de l'ostéogenèse

L'application la plus fondamentale des cellules MC3T3-E1 réside dans leur rôle de modèle quantitatif de la différenciation ostéoblastique. L’étude phare de Yohay et al. a permis de caractériser les différents stades de prolifération et de différenciation des cellules murines MC3T3-E1 en culture, fournissant ainsi un cadre temporel permettant de comprendre comment ces préostéoblastes passent par les phases de croissance, de maturation de la matrice et de minéralisation. [5] Ces travaux ont permis de définir cette lignée cellulaire comme un modèle in vitro approprié de l’ostéogenèse et d’établir des paramètres de référence expérimentaux — tels que l’activité de la phosphatase alcaline (ALP), le dépôt de matrice de collagène et la minéralisation des nodules — qui sont encore couramment utilisés aujourd’hui. La clarté de ces étapes de développement a fait de la lignée MC3T3-E1 la norme de référence à l’aune de laquelle sont évalués les nouveaux protocoles ostéogéniques et les milieux de différenciation.

Les études sur les voies de signalisation ont eu recours aux cellules MC3T3-E1 pour analyser les mécanismes moléculaires de l’ostéogenèse. Wang et al. ont démontré que l’apéline-13 active la voie BMP4/SMAD1/5/8 par l’intermédiaire de son récepteur APJ, ce qui entraîne une régulation à la hausse des marqueurs ostéogéniques ALP, ostéocalcine, ostéopontine et Col1A1, ainsi qu’une augmentation de l’expression de RUNX2 tant au niveau de l’ARNm que de la protéine dans les cellules MC3T3-E1. [7] La régulation de la différenciation par les microARN a également fait l’objet d’études : Zhai et al. ont démontré que l’axe miR-211-5p/FOXO3 favorise la différenciation ostéogénique des cellules MC3T3-E1 et des cellules souches mésenchymateuses du moelle osseux (BMSC) en activant la voie Wnt/β-caténine, ce qui a des implications pour la guérison des fractures ostéoporotiques. [8] Des recherches sur la contrainte de cisaillement des fluides menées à l'aide de cellules MC3T3-E1 ont en outre révélé que l'autophagie induite par l'annexine A6 régule la différenciation ostéogénique induite mécaniquement, une découverte pertinente pour la compréhension de la physiologie des os soumis à des charges. [9]

Les cellules MC3T3-E1 ont été utilisées pour former des sphéroïdes tridimensionnels qui reproduisent mieux le microenvironnement des ostéoblastes in vivo. Wen et al. ont généré des sphéroïdes spontanés de MC3T3-E1 à l'aide d'un système de culture à faible adhérence et ont démontré une augmentation significative de l'activité de la phosphatase alcaline (ALP) et de l'expression des gènes ostéogéniques par rapport aux cultures monocouches. [10] Ces sphéroïdes ont favorisé la régénération de l'os alvéolaire et atténué l'inflammation dans un modèle murin d'autotransplantation dentaire, soulignant ainsi l'intérêt des systèmes de culture tridimensionnels à base de cellules MC3T3-E1 pour les applications d'ingénierie tissulaire.

Recherche sur l'ostéoporose et découverte de médicaments

Les cellules MC3T3-E1 constituent une plateforme in vitro de premier plan pour l’évaluation de candidats-médicaments contre l’ostéoporose. Il a été démontré que la quercétine, un flavonoïde d’origine naturelle, atténuait le dysfonctionnement des ostéoblastes chez les rats atteints d’ostéoporose en régulant la ferroptose par l’intermédiaire de la voie de signalisation Nrf2/SLC7A11/GPX4; une validation in vitro réalisée à l’aide de cellules MC3T3-E1 a confirmé le rôle de cette voie dans la survie et le fonctionnement des ostéoblastes. [11] De même, l’extrait protéique de bois de cerf pilose (PAE) a favorisé la viabilité, la prolifération et la différenciation ostéogénique des cellules MC3T3-E1 tout en activant la voie de signalisation Wnt/β-caténine, ce qui reflète ses effets bénéfiques sur la microarchitecture trabéculaire chez les rats ovariectomisés. [12]

Les polysaccharides issus de plantes médicinales traditionnelles ont également été évalués à l’aide de cellules MC3T3-E1 dans le cadre d’une étude in vitro plus large sur la lutte contre l’ostéoporose. Yang et al. ont caractérisé deux polysaccharides de Psoralea corylifolia et ont démontré leur capacité à stimuler l’activité ostéogénique dans les cellules MC3T3-E1, ce qui vient corroborer les résultats in vivo faisant état d’une amélioration de la densité minérale osseuse chez des souris atteintes d’ostéoporose induite par les glucocorticoïdes. [13] Il a été démontré que les nanoparticules de curcumine associées au narlumosbart favorisaient de manière synergique la différenciation des ostéoblastes dans les cellules MC3T3-E1 par le biais de la voie Wnt/β-caténine, offrant ainsi une stratégie combinatoire à base de nanoparticules pour la réparation des traumatismes osseux. [14]

L’ostéomyélite, une infection osseuse grave, a fait l’objet d’études utilisant des cellules MC3T3-E1 traitées à la protéine A staphylococcique (SPA) comme modèle d’infection in vitro. Chen et ses collègues ont utilisé la randomisation mendélienne combinée à ces expériences in vitro pour démontrer que le métabolite circulant, le sulfate de p-crésol, altère la prolifération et la différenciation ostéogénique des cellules MC3T3-E1, apportant ainsi de nouvelles perspectives mécanistiques sur les facteurs métaboliques impliqués dans la pathogenèse de l’ostéomyélite. [15] L'inhibition de la ferroptose à l'aide de la ferrostatine-1 a également fait l'objet d'études sur des cellules MC3T3-E1; les résultats suggèrent que la suppression de la mort cellulaire par ferroptose améliore la viabilité des ostéoblastes et leur activité ostéogénique.

Biomatériaux, science des implants et ingénierie des tissus osseux

Les cellules MC3T3-E1 constituent la norme de référence pour évaluer la biocompatibilité et le potentiel ostéoinducteur de nouveaux biomatériaux. Liu et al. ont mis au point un échafaudage en hydroxyapatite de carbonate (Tb-CHA) dopé au terbium et ont utilisé des cellules MC3T3-E1 pour démontrer que ce matériau favorisait considérablement la prolifération et la différenciation cellulaires in vitro; une validation in vivo ultérieure, réalisée dans un modèle de lésion du crâne chez le rat, a confirmé ses capacités ostéogéniques et angiogéniques. [16] La possibilité d'établir une corrélation entre les réponses in vitro de la lignée cellulaire MC3T3-E1 et les résultats de la régénération osseuse in vivo confère à cette lignée cellulaire une valeur particulière dans la conception itérative de matériaux de substitution osseuse.

L’ingénierie des surfaces des implants en titane s’est largement appuyée sur les cellules MC3T3-E1 pour quantifier le potentiel d’ostéointégration. Liao et Li ont mis au point un revêtement composite à base d’épigallocatéchine-3-gallate (EGCG), d’hydroxyapatite (HAP) et de nanoparticules d’argent (AgNPs) sur des surfaces en titane et ont démontré que ce revêtement EGCG/HAP/AgNPs améliorait l’activité antibactérienne tout en favorisant l’adhésion, la prolifération et la différenciation ostéogénique des cellules MC3T3-E1. [17] Ces résultats montrent comment les cellules MC3T3-E1 permettent d’optimiser les revêtements d’implants, qui doivent trouver un équilibre entre efficacité antimicrobienne et compatibilité avec les cellules de l’hôte.

Les nanoparticules d’oxyde de zinc (ZnO-NP) constituent une autre catégorie de matériaux biomédicaux évalués sur des cellules MC3T3-E1. Ryu et al. ont évalué de manière systématique les effets, en fonction de la concentration, des extraits de ZnO-NP sur la cytocompatibilité et l’activité ostéogénique, et ont constaté que de faibles concentrations favorisaient les réponses ostéoblastiques, tandis que des concentrations plus élevées étaient cytotoxiques. [18] Cette caractérisation dépendante de la dose souligne l’importance d’utiliser des tests MC3T3-E1 normalisés pour définir les marges de sécurité et d’efficacité des stratégies de réparation osseuse fondées sur les nanomatériaux. La technologie du plasma atmosphérique froid (CAP) a également été évaluée pour sa capacité à stimuler la différenciation ostéogénique des cellules MC3T3-E1 de manière dépendante du temps, ouvrant ainsi la voie à des applications potentielles dans la régénération de l’os alvéolaire. [19]

Microgravité et mécanobiologie

Les cellules MC3T3-E1 ont permis d’acquérir des connaissances fondamentales sur la manière dont la réduction des contraintes mécaniques et gravitationnelles influe sur la biologie des ostéoblastes. Hughes-Fulford et Lewis ont embarqué des ostéoblastes MC3T3-E1 à bord de la mission STS-56 de la navette spatiale et ont démontré que les cellules activées en microgravité présentaient une croissance altérée malgré une stimulation sérique normale, avec une organisation cytosquelettique modifiée et une synthèse réduite de prostaglandines par rapport aux témoins au sol. [20] Ces résultats ont permis d'établir les mécanismes cellulaires à l'origine de la perte de densité minérale osseuse, bien documentée, que subissent les astronautes lors de vols spatiaux de longue durée.

Des travaux ultérieurs menés par Hughes-Fulford ont étendu ces observations à l'expression génique et à la transduction du signal, démontrant que la microgravité modifie le programme transcriptionnel des ostéoblastes MC3T3-E1 d'une manière qui contribue à expliquer la diminution de la formation osseuse en l'absence de charge gravitationnelle. [21] Ensemble, ces études de biologie spatiale ont permis d’établir que les cellules MC3T3-E1 constituent le principal modèle in vitro pour l’étude des conséquences cellulaires de la microgravité sur le squelette, ce qui revêt une importance directe pour l’élaboration de contre-mesures contre la perte osseuse en médecine spatiale.

Sur Terre, les études en mécanobiologie ont exploité le système MC3T3-E1 pour comprendre comment la contrainte de cisaillement fluide — qui sert d’indicateur du flux interstitiel dans les réseaux lacunocanaliculaires osseux — régule la différenciation des ostéoblastes. Des recherches ont démontré que l’autophagie médiée par l’annexine A6 établit un lien entre la stimulation mécanique et l’expression des gènes ostéogéniques dans les cellules MC3T3-E1, fournissant ainsi des détails moléculaires sur la façon dont les cellules osseuses détectent les charges physiques et y réagissent. [9] Ces applications en mécanobiologie placent les cellules MC3T3-E1 à la croisée de la biophysique et de la médecine régénérative.

Régénération parodontale et osseuse alvéolaire

La perte osseuse liée à la parodontite constitue un défi clinique majeur, et les cellules MC3T3-E1 sont devenues un outil in vitro essentiel pour évaluer les stratégies de régénération parodontale. Kong et ses collègues ont mis au point un nanomatériau multifonctionnel à base de points de carbone (ASA-ALN-CDs), dérivé de l’aspirine et de l’alendronate de sodium, qui a démontré une puissante activité antibiofilm contre les agents pathogènes parodontaux et favorisé la différenciation ostéogénique des cellules MC3T3-E1 dans des conditions inflammatoires. [22] Dans un modèle de parodontite chez le rat, ce matériau a permis de réduire la perte osseuse alvéolaire et l’inflammation en inhibant la voie de signalisation HIF-1α; les données in vitro obtenues avec la lignée cellulaire MC3T3-E1 ont fourni une justification mécanistique directe des effets observés in vivo.

Des études sur le plasma atmosphérique froid (CAP) ont spécifiquement porté sur la régénération de l’os alvéolaire en exposant des cellules MC3T3-E1 à une source de CAP à l’hélium spécialement conçue. Negrescu et al. ont démontré que le traitement par plasma atmosphérique froid modulait la survie cellulaire et la différenciation ostéogénique de manière dépendante du temps, ce qui a été évalué au moyen de tests de viabilité « vivants/morts », de tests de viabilité CCK-8, de mesures de l’activité de la phosphatase alcaline (ALP) et d’une caractérisation morphologique. [19] Ces résultats ont permis de positionner la CAP comme une thérapie physique d'appoint potentielle pour les défauts de l'os alvéolaire, les cellules MC3T3-E1 fournissant les mesures quantitatives de différenciation nécessaires à l'optimisation des paramètres thérapeutiques.

L'approche de culture en sphéroïdes tridimensionnels mise au point avec les cellules MC3T3-E1 présente un intérêt direct pour la médecine régénérative dentaire. Le système de support à base de sphéroïdes et de collagène évalué par Wen et al. dans un modèle d’autotransplantation dentaire a permis d’obtenir une régénération osseuse alvéolaire et une expression génique anti-inflammatoire supérieures à celles observées dans les groupes témoins à monocouche cellulaire, ce qui suggère que l’activité paracrine accrue des sphéroïdes MC3T3-E1 pourrait se traduire par des gains cliniquement significatifs dans la cicatrisation de l’alvéole dentaire. [10]

Conclusion

Les cellules MC3T3-E1 demeurent un modèle indispensable et largement validé pour la recherche en biologie osseuse. Depuis leur caractérisation initiale en tant que lignée clonale de préostéoblastes capable de minéralisation in vitro jusqu’à leur utilisation actuelle dans des domaines de pointe tels que la bio-impression 3D, l’administration de médicaments à base de nanoparticules, la régénération parodontale et la médecine spatiale, ces cellules ont démontré une polyvalence scientifique extraordinaire. Leurs stades de différenciation bien définis, leur expression robuste des marqueurs et leur réactivité à un large éventail de stimuli ostéogéniques en font la lignée cellulaire de référence pour évaluer de nouveaux biomatériaux, identifier des cibles thérapeutiques dans l’ostéoporose et l’ostéomyélite, et analyser les voies de signalisation qui régissent la formation osseuse. Que vous meniez des recherches sur la ferroptose, la mécanobiologie ou les revêtements d’implants de nouvelle génération, les cellules MC3T3-E1 offrent la plateforme reproductible et biologiquement pertinente dont votre recherche a besoin. Consultez les spécifications complètes ou passez une commande Cellules MC3T3-E1 directement à cytion.com.

Publications clés

1. Sudo H, Kodama HA, Amagai Y (1983) Différenciation et calcification in vitro d’une nouvelle lignée cellulaire ostéogénique clonale dérivée du crâne d’une souris nouveau-née. The Journal of Cell Biology. PMID : 6826647
2. Chen YH, Connelly JP, Florian C (2023) Profilage des séquences répétées en tandem courtes par séquençage de nouvelle génération pour l’authentification des lignées cellulaires. Disease Models & Mechanisms. PMID : 37712227
3. Didion JP, Buus RJ, Naghashfar Z (2014) L’analyse par puce à SNP de lignées cellulaires de souris permet d’identifier leurs souches d’origine et révèle une contamination croisée ainsi qu’une aneuploïdie généralisée. BMC Genomics. PMID : 25277546
4. Wang D, Christensen K, Chawla K (1999) Isolation et caractérisation de sous-clones de préostéoblastes MC3T3-E1 présentant un potentiel de différenciation et de minéralisation distinct in vitro et in vivo. Journal of Bone and Mineral Research. PMID : 10352097
5. Quarles LD, Yohay DA, Lever LW (1992) Stades distincts de prolifération et de différenciation des cellules murines MC3T3-E1 en culture : un modèle in vitro du développement des ostéoblastes. Journal of Bone and Mineral Research. PMID : 1414487
6. Baba TT (2000) Rétablissement des dépôts minéraux par la dexaméthasone dans la matrice de cellules ostéoblastiques non minéralisantes sous-clonées à partir de cellules MC3T3-E1. Calcified Tissue International. PMID : 11136541
7. Wang C, Li Z, Yang H (2026) L’apéline-13 active la voie BMP4/SMAD par l’intermédiaire de l’APJ afin de favoriser la différenciation ostéoblastique et la minéralisation. Tissue & Cell. PMID : 42269418
8. Zhai H, Lin M, Lu C (2026) L’axe miR-211-5p/FOXO3 accélère la différenciation ostéogénique et la guérison des fractures en agissant sur la voie Wnt/β-caténine. Journal of Orthopaedic Surgery and Research. PMID : 42219493
9. Pei T, Su G, Yang J (2026) Rectification : La contrainte de cisaillement des fluides régule la différenciation ostéogénique par le biais de l’autophagie médiée par l’annexine A6 dans les cellules MC3T3-E1. International Journal of Molecular Sciences. PMID : 42196630
10. Wen Z, Li X, Yue L (2026) Les sphéroïdes de cellules souches mésenchymateuses formés spontanément favorisent la régénération de l’os alvéolaire et atténuent l’inflammation à la suite d’une autotransplantation dentaire. Regenerative Therapy. PMID : 42199333
11. Gong J, Ma Y, Huang J (2026) L’extrait protéique de bois de cerf velu atténue l’ostéoporose et est associé à l’activation de la voie de signalisation Wnt/β-caténine. Pharmaceuticals (Bâle, Suisse). PMID : 42198339
12. He L, Zheng Y, Zeng Z (2026) Effet de la quercétine sur le dysfonctionnement des ostéoblastes chez des rats atteints d’ostéoporose par la régulation de la ferroptose médiée par la voie Nrf2/SLC7A11/GPX4. Cytotechnology. PMID : 42238059
13. Yang J, Tang Z, Chen C (2026) Caractérisation structurale et potentiel anti-ostéoporotique in vivo et in vitro de deux polysaccharides de Psoralea corylifolia L. Carbohydrate Polymers. PMID : 42173575
14. Zhang H, Zhao Y (2026) Les nanoparticules de curcumine associées au narlumosbart régulent la voie de signalisation « wingless-type MMTV integration site (wnt)/β-caténine » dans les cellules de type ostéoblastes. Pakistan Journal of Pharmaceutical Sciences. PMID : 42170973
15. Chen X, Mo R, Yang S (2026) Cytokines inflammatoires et voies métaboliques dans l’ostéomyélite : aperçus issus de la randomisation mendélienne et validation expérimentale. Advances in Clinical and Experimental Medicine. PMID : 42200571
16. Liu P, Shen J, Bian Y (2026) Une structure d’hydroxyapatite carbonatée imprimée en 3D et dopée au terbium favorise la régénération osseuse. Journal of Translational Medicine. PMID : 42260646
17. Liao J, Li Z (2026) Effet antibactérien et ostéogénique d’un revêtement composite à base d’EGCG/HAP/AgNPs sur une surface en titane. Journal of Materials Science: Materials in Medicine. PMID : 42216990
18. Ryu JH, Mangal U, Kim JH (2026) Effets dépendants de la dose des nanoparticules d’oxyde de zinc sur la réponse cellulaire des préostéoblastes. Scientific Reports. PMID : 42303653
19. Negrescu AM, Zampieri L, Martines E (2026) Modulation en fonction du temps des préostéoblastes MC3T3-E1 par un plasma froid à l’hélium : étude préliminaire sur son intérêt potentiel pour la régénération de l’os alvéolaire. Biomedical Physics & Engineering Express. PMID : 42208566
20. Kong J, Li H, Guo X (2026) Efficacité thérapeutique des ASA-ALN-CD dans le traitement de la parodontite : de l’action antibiofilm et anti-inflammatoire à la régénération de l’os alvéolaire. ACS Biomaterials Science & Engineering. PMID : 42213513
21. Hughes-Fulford M, Lewis ML (1996) Effets de la microgravité sur l’activation de la croissance des ostéoblastes. Experimental Cell Research. PMID : 8612673
22. Hughes-Fulford, M. (2001) Modifications de l’expression génique et de la transduction du signal en microgravité. Journal of Gravitational Physiology. PMID : 12638602