Células C2C12
USD 395.00*
Los productos se envían congelados en hielo seco dentro de criotubos. Cada criotubo suele contener 3 × 10⁶ células en el caso de las líneas adherentes o 5 × 10⁶ células en el caso de las líneas en suspensión (consulte el certificado de análisis del lote para obtener más detalles).
Avances en la investigación muscular mediante miotubos C2C12
| Descripción | La línea celular C2C12, una línea de mioblastos de ratón inmortalizados derivada del músculo del muslo de un ratón de 2 meses de edad de la cepa C3H, se utiliza ampliamente en la investigación biomédica por sus propiedades únicas de diferenciación celular. Las células mioblásticas C2C12 proliferan rápidamente y exhiben características típicas de los mioblastos en condiciones de alto contenido de suero. Al pasar a condiciones de bajo contenido de suero o a privación de nutrientes, las células C2C12 inician la diferenciación miogénica, transformándose en miotubos, que son precursores de las células contráctiles del músculo esquelético. Las células C2C12 incorporan fácilmente ADNc y ácidos nucleicos exógenos mediante transfección, lo que las convierte en una buena opción para estudios de expresión génica e investigaciones sobre la diferenciación de mioblastos y miotubos. El proceso de diferenciación se caracteriza por la expresión de marcadores miogénicos como Myf5, MyoD, Myogenin y Mrf4, junto con marcadores específicos del músculo como Csrp3 y Mef2a, que son esenciales para estudiar diferentes fenotipos musculares y la regeneración del músculo esquelético. La forma única de los mioblastos C2C12 y su transformación en anillos de células mioblásticas y, posteriormente, en miotubos maduros en medios suplementados con suero resaltan la naturaleza dinámica de estas células y su potencial en la investigación del músculo esquelético. Los investigadores utilizan sustratos como los hidrogeles de gelatina para los cultivos de células C2C12 con el fin de simular las condiciones musculares in vivo, lo que permite realizar estudios detallados del desarrollo de las células musculares y los efectos de la matriz extracelular. El perfil metabólico revela información clave sobre las vías involucradas en la formación y recuperación muscular, centrándose en proteínas esenciales y en el papel del calcio en la contracción. Las técnicas de silenciamiento génico aclaran aún más el proceso de diferenciación, resaltando la importancia de la fosforilación de SMAD1 en la regeneración muscular, lo cual es crucial para comprender la recuperación en casos de atrofia y lesiones musculares. En resumen, la línea celular C2C12 constituye una herramienta fundamental en el ámbito de la investigación biomédica, ya que ofrece una plataforma versátil para explorar las complejidades de la formación y diferenciación muscular, la expresión génica y el profundo impacto de diversos factores en el linaje de las células del músculo esquelético, incluyendo el papel fundamental de los miofilamentos, las proteínas de los filamentos intermedios y el contexto general del organismo en el que se desarrollan estos procesos celulares. |
|---|---|
| Organismo | Ratón |
| Tejido | Músculo |
| Aplicaciones | Huésped de transfección |
| Sinónimos | C2c12, C2-C12, C12 |
Propiedades
| Raza/Subespecie | C3H |
|---|---|
| Edad | 2 meses |
| Género | Mujer |
| Morfología | De tipo mioblástico |
| Tipo de célula | Mióblasto |
| Propiedades de crecimiento | Adherente |
Especificaciones
| Referencia | C2C12 (número de catálogo de Cytion 400476) |
|---|---|
| Nivel de bioseguridad | 1 |
| NCBI_TaxID | 10090 |
| N.º de acceso de Cellosaurus | CVCL_0188 |
Perfil genético de la línea celular de ratón C2C12
Métodos de cultivo
| Medio de cultivo | RPMI 1640, con 2,0 mM de glutamina estable y 2,0 g/L de NaHCO₃ (número de artículo de Cytion: 820700a) |
|---|---|
| Suplementos | Añade al medio un 10 % de FBS |
| Reactivo de disociación | Accutase |
| Tiempo de duplicación | 24 horas |
| Subcultivo | Retira el medio usado de las células adheridas y lávalas con PBS sin calcio ni magnesio. Para los frascos T25, usa de 3 a 5 ml de PBS, y para los frascos T75, usa de 5 a 10 ml. Luego, cubra las células por completo con Accutase, utilizando de 1 a 2 ml para los frascos T25 y 2,5 ml para los frascos T75. Deje que las células se incuben a temperatura ambiente durante 8 a 10 minutos para desprenderse. Después de la incubación, mezcla suavemente las células con 10 ml de medio para resuspendarlas; luego, centrifuga a 300xg durante 3 minutos. Deseche el sobrenadante, resuspenda las células en medio fresco y transfiéralas a frascos nuevos que ya contengan medio fresco. |
| Densidad de siembra | 1 x 10⁴ células/cm² formarán una capa confluente en unos 4 días |
| Renovación de fluidos | Cada 3 a 5 días |
| Recuperación tras el deshielo | Después de descongelarlas, siembre las células a una densidad de 5 × 10⁴ células/cm² y deje que se recuperen del proceso de congelación y se adhieran durante al menos 24 horas. |
| Medio de congelación | Como medio de criopreservación, utilizamos un medio de crecimiento completo (que incluye FBS) + 10 % de DMSO para garantizar una viabilidad adecuada tras la descongelación, o CM-1 (número de catálogo de Cytion 800100), que incluye osmoprotectores y estabilizadores metabólicos optimizados para mejorar la recuperación y reducir el estrés inducido por la criopreservación. |
| Descongelación y cultivo de células |
|
| Atmósfera de incubación | 37 °C, 5 % de CO₂, atmósfera humidificada. |
| Condiciones de envío | Las líneas celulares criopreservadas se envían en hielo seco, en un embalaje aislante validado que contiene suficiente refrigerante para mantener una temperatura de aproximadamente −78 °C durante todo el transporte. Al recibir el envío, revise el contenedor de inmediato y traslade los viales sin demora al lugar de almacenamiento adecuado. |
| Condiciones de almacenamiento | Para la conservación a largo plazo, coloque los viales en nitrógeno líquido en fase de vapor a una temperatura de entre −150 y −196 °C, aproximadamente. El almacenamiento a −80 °C solo es aceptable como un paso intermedio breve antes de transferirlos al nitrógeno líquido. |
Control de calidad en células C2C12
| Esterilidad | Se descarta la contaminación por micoplasmas mediante ensayos basados en PCR y métodos de detección de micoplasmas basados en luminiscencia. Para garantizar que no haya contaminación bacteriana, fúngica o por levaduras, los cultivos celulares se someten a inspecciones visuales diarias. |
|---|
Certificado de análisis (CoA)
| Número de lote | Tipo de certificado | Fecha | Número de catálogo |
|---|---|---|---|
| 400476-1122 | Certificado de análisis | 23. May. 2025 | 400476 |
| 400476-180324 | Certificado de análisis | 23. May. 2025 | 400476 |
| 400476-1122 | Certificado de análisis | 18. Aug. 2025 | 400476 |
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