タンパク質のグリコシル化を促進するHEK293の代謝工学

糖鎖修飾は、治療タンパク質の有効性、安定性、免疫原性に影響を及ぼす最も重要な翻訳後修飾の一つです。サイシオンは、最適な糖鎖プロファイルを持つ組換えタンパク質を生産するには、細胞代謝と糖鎖修飾機構に関する高度な理解が必要であることを理解しています。HEK293細胞は、ヒト由来であるため、内在性ヒトタンパク質に近いネイティブな糖鎖付加パターンが保証され、非ヒト発現系と比較して極めて重要な利点があるため、糖タンパク質生産において他に類を見ない有利なプラットフォームを提供します。

要点

  • HEK293細胞は、特定の治療薬においてCHO細胞よりも優れたヒト適合性糖鎖構造を産生する
  • ヌクレオチド糖前駆体の補充は、グリコシル化部位の占有率を直接高める
  • 温度、pH、溶存酸素などの培養条件が糖鎖プロファイルに大きな影響を与える
  • 遺伝子工学的アプローチにより、特定の治療用途向けに糖鎖構造をカスタマイズできる
  • 分析的特性評価戦略は糖タンパク質の品質評価に不可欠である
HEK293糖鎖工学の概要 ヌクレオチド糖 UDP-グルコース UDP-Gal糖鎖 UDP-GlcNAc GDP-マン GDP-フコース CMP-シア 前駆体プール 強化 ↑ ガラクトース補足 小胞体 小胞体 N-グリカン開始 Glc₃Man₉GlcNAc₂ OST複合体 Asn-X-Ser/Thr グルコシダーゼI/II α-マンノシダーゼI 品質管理 ゴルジ装置 シスゴルジ体 マン5GlcNAc 内側ゴルジ体 GnT-I, GnT-II トランス-ゴルジ体 ガラクトシル化 シアル化 フコシル化 分泌 糖タンパク質 複合型 バイアンテナ型 三アンテナ型 四核型 ヒト型 α2,6-シアリル化 グリコシル化に及ぼす培養パラメータの影響 温度 ↓ (32-34°C) → ↑ シアリル化 pH 6.8-7.0 → ガラクトシル化 DO 30~50 → 最適な処理 Mn²⁺サプリメント → ↑ GnT活性 HEK293 vs CHO 糖鎖形成 HEK293 α2,6 + α2,3シアル酸結合 CHO: α2,3シアル酸のみ HEK293: バイセクティングGlcNAc存在 CHO: バイセクティングGlcNAcなし 代謝工学戦略 遺伝子過剰発現 GalT, SiaT, FucT 遺伝子ノックアウト アフコシル化のためのFUT8 経路摂食 ManNAc, ガラクトース 培地の最適化 微量金属、糖 サイシオン - 卓越した糖タンパク質生産

HEK293細胞のグリコシル化の優位性

ヒト胚性腎臓293細胞は、他の哺乳動物発現系とは異なる独特のグリコシル化能力を有している。専らα2,3結合シアル酸を産生するチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞とは異なり、HEK293細胞はα2,3-およびα2,6-シアル酸転移酵素の両方を発現し、よりネイティブなヒト糖タンパク質に近い糖鎖構造を生成する。

この区別は治療上重要な意味を持つ。免疫グロブリンや凝固因子を含む多くのヒト血清糖タンパク質はかなりの割合でα2,6結合シアル酸を含んでいる。従って、HEK293細胞で生産された治療用タンパク質は、CHO由来のものと比較して、薬物動態学的プロフィールが改善され、免疫原性が低減されている可能性がある。

当社のHEK293細胞(300192)は、ネイティブな糖鎖形成機構を維持しながら強固な増殖特性を提供し、糖タンパク質生産の優れた出発点となります。より高いトランスフェクション効率を必要とするアプリケーションには、当社のHEK293T細胞(300189)が迅速な発現研究を可能にします。

ヌクレオチド糖代謝および前駆体工学

グリコシル化の効率は、基本的に小胞体およびゴルジ装置内でのヌクレオチド糖供与体の利用可能性に依存する。これらの活性化された糖分子(UDP-グルコース、UDP-ガラクトース、UDP-N-アセチルグルコサミン、GDP-マンノース、GDP-フコース、CMP-シアル酸など)は、糖鎖を構築する糖転移酵素の基質として機能する。

代謝工学的アプローチは、いくつかのメカニズムを通してヌクレオチド糖プールを増強することができる。ガラクトース、マンノース、N-アセチルマンノサミン(ManNAc)のような単糖を培地に直接添加することで、細胞が対応するヌクレオチド糖に変換できるサルベージ経路基質が得られる。MNAcを10-40mM添加すると、様々な細胞株でシアル化レベルが有意に増加することが証明されている。

遺伝学的アプローチはより永続的な解決策を提供する。CMP-シアル酸合成酵素、UDP-グルコースピロホスホリラーゼ、GDP-マンノースピロホスホリラーゼなどのヌクレオチド糖生合成経路の主要酵素を過剰発現させると、培地補充を必要とせずに前駆体プールを持続的に増加させることができる。

糖鎖品質のための培養条件の最適化

環境パラメーターは糖鎖付加の結果に多大な影響を及ぼし、糖鎖プロファイルへの影響において遺伝的修飾に匹敵することが多い。生産段階における37℃から32-34℃への温度低下は、ゴルジ体内でのタンパク質の滞留時間の延長とシアリダーゼ活性の低下との組み合わせにより、シアル化を促進することが一貫して示されている。

培養pHは糖転移酵素活性と糖鎖安定性の両方に影響を及ぼす。pHを6.8から7.2の間に維持することが一般的に最適なグリコシル化を支持するが、具体的な最適値は標的タンパク質と希望する糖鎖プロファイルによって異なる。pHが6.5を下回るとシアル酸の切断が促進され、末端シアル化が減少する。

溶存酸素濃度は細胞代謝に影響を与え、その結果、グリコシル化に影響を与える。低酸素状態(空気飽和度20%以下)は細胞の成長と生産性を損なうが、中程度の酸素レベル(空気飽和度30-50%)は通常、強固なグリコシル化を支持する。高酸素条件下では、糖タンパク質を損傷したり、グリコシル化機構を妨害する活性酸素種が発生する可能性がある。

当社のDMEM:Ham's F12 (1:1)培地 (820400a)は、糖タンパク質生産に最適な基本処方で、細胞増殖と翻訳後処理の両方をサポートするバランスのとれた栄養組成を提供します。

カスタマイズされたグリコシル化のための遺伝子工学

最新の遺伝子工学ツールにより、HEK293の糖鎖付加能を正確に改変し、オーダーメイドの糖鎖構造を持つタンパク質を生産することができる。CRISPR/Cas9技術はこの分野に革命をもたらし、特定の糖転移酵素の効率的なノックアウトや新しい酵素活性の導入を可能にした。

アフコシル化抗体は糖鎖工学の顕著な応用例である。α1,6-フコシルトランスフェラーゼをコードするFUT8遺伝子のノックアウトはN-糖鎖からのコアフコシル化を除去する。アフコシル化抗体は、がん治療薬に望ましい特性である抗体依存性細胞傷害性(ADCC)を劇的に増強する。

逆に、糖転移酵素を過剰発現させると、特異的な修飾が促進される。β1,4-N-アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼIII (GnT-III)を導入すると、エフェクター機能の増強に関連するもう一つの修飾であるN-アセチルグルコサミンを二等分した抗体を産生する。ガラクトース転移酵素とシアリル転移酵素の過剰発現は末端糖鎖のキャッピングを増加させ、血清中半減期を改善する可能性がある。

大規模な糖タンパク質生産をサポートする懸濁培養アプリケーションのために、我々のHEK293懸濁適応細胞(300686)は、所望の糖鎖修飾を組み込むようにさらに操作することができる。

グリコシル化評価のための分析戦略

包括的な糖鎖特性評価には、複数の相補的な分析アプローチが必要です。蛍光検出付き親水性相互作用液体クロマトグラフィー(HILIC)を用いた放出型糖鎖分析では、優れた感度で詳細な糖鎖プロファイリングが可能です。質量分析計は構造的な確認を加え、予期しない修飾の同定を可能にします。

部位特異的グリコシル化解析は、糖タンパク質に固有の不均一性に対処する。LC-MS/MSを用いた糖ペプチドマッピングは、個々のグリコシル化部位の占有率と各部位に存在する糖鎖構造の両方を明らかにする。この情報は、構造と機能の関係を理解し、バッチ間の一貫性を確保するために極めて重要です。

迅速なスクリーニング法は、プロセス開発と品質管理をサポートします。レクチンをベースとしたアッセイ、キャピラリー電気泳動、および糖鎖特異的抗体により、大規模なサンプル調製を必要とせずに、主要な糖鎖属性をハイスループットで評価することができます。

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