HEK細胞ベースのハイスループットGPCRスクリーニング・プラットフォーム

Gタンパク質共役型受容体(GPCR)は、ヒトゲノム上に存在する最大の膜タンパク質ファミリーであり、全薬物標的の約34%を占めています。サイシオンは、GPCRを標的とした効果的な治療薬の開発には、数千から数百万の化合物の受容体活性化を正確に測定できる強固な細胞ベースのスクリーニング・プラットフォームが必要であると認識しています。HEK293細胞は、効率的な受容体発現、低い内因性受容体バックグラウンド、多様なアッセイフォーマットとの互換性というユニークな組み合わせを提供し、GPCR発現および機能スクリーニングに適した宿主として浮上してきました。

要点

  • HEK293細胞は、内因性受容体からの干渉を最小限に抑え、異種GPCR発現に理想的なバックグラウンドを提供する。
  • 複数のアッセイフォーマット(カルシウムフラックス、cAMP、β-アレスチンのリクルートメント)により、包括的なパスウェイの調査が可能。
  • 自動化されたリキッドハンドリングとプレートリーダーにより、1日あたり10万化合物を超えるスクリーニングスループットを実現
  • 安定した細胞株開発戦略により、スループット要件とアッセイの一貫性のバランスが取れる
  • 偏ったアゴニズムの検出には、異なるシグナル伝達カスケードにわたる多重リードアウトが必要
HEK293ベースGPCRハイスループットスクリーニングプラットフォーム GPCRシグナル伝達経路 GPCR Gαs ↑cAMP Gαq ↑Ca²⁺ β-arr リクルート アッセイ技術 カルシウムフラックス Fluo-4/Fura-2 FLIPR/プレートリーダー cAMPアッセイ HTRF/アルファスクリーン グロセンサー β-アレスチン パスハンター BRET/NanoBiT レポーター遺伝子 CRE-Luc NFAT-Luc HTSワークフロー セルシーディング 384/1536ウェル 化合物 添加 検出 読み出し 分析 ヒットセレクション GPCRスクリーニングにおけるHEK293の利点 低バックグラウンド 最小限の内因性 GPCR発現 クリーンなシグナル/ノイズ 高発現 効率的なトランスフェクション 強力なCMVプロモーター 10⁵-10⁶ レセプター/細胞 完全なシグナル伝達 全てのGタンパク質サブタイプ アダプタータンパク質の存在 ネイティブなパスウェイカップリング アッセイ互換性 マイクロプレートで堅牢 懸濁液適合 自動処理 スクリーニングスループット指標 フォーマット ウェル/プレート 化合物/日 96ウェル 96 5,000-10,000 384ウェル 384 20,000-50,000 1536ウェル 1536 100,000-500,000 3456ウェル 3456 500,000-1,000,000+ 安定した細胞株開発 1.選択マーカー付きベクターデザイン 2.HEK293親細胞のトランスフェクション 3.抗生物質選択(2-4週間) 4.単一細胞クローニング(FACS/限界希釈) 5.発現/機能クローンスクリーニング 6.細胞バンクと安定性試験 タイムライン:3~6ヶ月 サイシオン - GPCR創薬を可能にする

GPCRスクリーニングにおいてHEK293細胞が優れている理由

HEK293細胞は、いくつかの本質的な利点により、GPCR機能アッセイにおける事実上の標準となっている。第一に、内因性GPCR発現が比較的低いため、異種受容体研究を混乱させるバックグラウンドシグナルを最小限に抑えることができる。機能的に関連するレベルで多数のGPCRを発現するある種の癌由来細胞株とは異なり、HEK293細胞は受容体発現のためのクリーンなキャンバスを提供する。

第二に、HEK293細胞はすべての主要なGタンパク質サブクラス(Gαs、Gαi、Gαq、Gα12/13)を、多様なレセプターのカップリングをサポートするのに十分なレベルで発現している。この完全なシグナル伝達レパートリーにより、特定のGタンパク質サブユニットの共発現を必要とすることなく、ネイティブなレセプター-Gタンパク質相互作用を調べることができる。

第三に、HEK293細胞は複数の試薬を用いて効率的にトランスフェクションを行い、90%を超えるトランスフェクション率を達成した。この効率は高い受容体発現レベル-通常細胞あたり10⁵から10⁶の受容体-につながり、適度なカップリング効率を持つ受容体であっても強固なシグナルウィンドウを提供します。

当社のHEK293T細胞(300189)は、一過性のGPCR発現において特に高いトランスフェクション効率を提供し、安定した細胞株を作製する前の初期の受容体特性解析やアッセイ開発に理想的です。

GPCRスクリーニングのためのアッセイフォーマット選択

カルシウムフラックスアッセイ:Gαq共役型受容体はホスホリパーゼCを活性化し、細胞内貯留物からのカルシウム放出を誘発する。Fluo-4、Fura-2のようなカルシウム感受性の蛍光色素、または遺伝的にコードされたカルシウムインジケータは、この反応のリアルタイム測定を可能にする。FLIPRのようなプレートベースの蛍光リーダーは、384または1536ウェルプレート全体のカルシウム過渡変化を同時に測定することができ、1日あたり10万データポイントを超えるスループットを達成する。

cAMPアッセイ:Gαs共役型受容体はアデニルシクラーゼを刺激し、細胞内cAMPを増加させるが、Gαi共役型受容体はcAMP産生を阻害する。競合イムノアッセイ(HTRF、AlphaScreen)、バイオセンサーに基づくアプローチ(GloSensor)、レポーター遺伝子アッセイ(CRE-ルシフェラーゼ)など、複数のアッセイ技術がcAMPの変化を検出する。それぞれ感度、動態、スループットにおいて明確な利点がある。

β-アレスチンのリクルートメントGPCRの活性化はβ-アレスチンの受容体へのリクルートメントを誘発し、このプロセスはタンパク質の相補性アッセイによって測定可能である。PathHunter(酵素断片相補)やNanoBiT(スプリットルシフェラーゼ)のような技術は、Gタンパク質カップリングの嗜好性に関係なく、受容体クラス全体に適用可能な高感度で経路に依存しない読み出しを提供します。

レポーター遺伝子アッセイ:転写レポーターシステムは、下流のシグナル伝達イベントを測定し、感度を高める増幅を提供する。CRE-ルシフェラーゼレポーターはcAMP経路の活性化を検出し、NFAT-ルシフェラーゼはカルシウムシグナルに反応し、SRE-ルシフェラーゼは複数の経路をモニターする。セカンドメッセンジャーを直接測定するよりも遅いが、レポーターアッセイは優れたシグナル/バックグラウンド比を提供する。

安定した細胞株開発戦略

ハイスループットスクリーニングキャンペーンでは、通常、数十億のアッセイウェルにわたって一貫したレベルで標的GPCRを発現する安定な細胞株が必要とされる。安定な細胞株の開発は、受容体と選択可能なマーカーの両方を組み込んだベクターのデザインから始まり、安定にトランスフェクトされた細胞の濃縮を可能にします。

当社のHEK293細胞(300192)は、安定細胞株作製の標準的な親株となる。トランスフェクションおよび抗生物質選択(通常2-4週間)の後、生存細胞は限界希釈法または蛍光活性化細胞選別法(FACS)による単一細胞クローニングを受ける。その後、個々のクローンが拡大され、受容体発現レベル、機能的反応の大きさ、アッセイの頑健性が特徴づけられる。

細胞株のスクリーニングにおいて重要な品質特性には、継代継代にわた る発現安定性、参照標準と比較した一貫した薬理学的特性、小型化されたプレ ートフォーマットにおける頑健な性能が含まれる。終始一貫した性能を保証するために、スクリーニング・キャンペーンの早い段階で適格な細胞のバンクを確立すべきである。

タイムラインを短縮するために、当社のHEK293 EBNA細胞(300264)はエピソームベクターからの安定した発現を可能にし、発現の一貫性を維持しながら開発期間を短縮できる可能性があります。

小型化と自動化の考察

スクリーニングのスループットを最大化するには、384ウェル、1536ウェル、あるいは3456ウェルフォーマットへの小型化が必要です。HEK293細胞は、細胞密度、プレーティング条件、およびインキュベーション時間の最適化が各フォーマットの移行に必要な場合がありますが、小容量での高密度プレーティングによく適応します。

懸濁液に適応したHEK293細胞は、自動化されたスクリーニングワークフローに利点をもたらします。当社のHEK293懸濁液適合細胞(300686)は、トリプシン処理なしで培養容器からアッセイプレートに直接分注することができ、ハンドリングステップを減らし、一貫性を向上させます。この自動リキッドハンドラーとの互換性により、真のウォークアウェイ・スクリーニング・キャンペーンが可能になります。

アッセイプレートの安定性要件は、フォーマットによって異なる。カルシウムフラックスアッセイでは通常、色素をロードしてから数時間以内に測定する必要があるが、cAMPやβ-アレスチンアッセイでは測定前に一晩インキュベートすることができる。これらの制約を理解することで、スクリーニングのロジスティックスと装置のスケジューリングが可能になる。

データ解析とヒット化合物の同定

GPCRスクリーニングキャンペーンは、堅牢な解析パイプラインを必要とする膨大なデータセットを生成する。Z因子、シグナル対バックグラウンド比、変動係数などの統計的パラメータは、プレートごとにアッセイの質を評価する。品質のしきい値に達しないプレートは、解析するよりもむしろ繰り返すべきである。

ヒット判定基準は、偽陽性率に対する感度のバランスをとる。参照化合物に対する活性化または阻害が50%という活性の閾値は合理的な出発点となるが、最適なカットオフ値はライブラリーの構成やプログラムの目標によって異なる。プライマリーヒットの濃度反応確認は、アーチファクトを排除し、フォローアップのための化合物のランク付けを行う。

現代のGPCR創薬では、特定のシグナル伝達経路を他の経路よりも優先的に活性化する化合物、すなわち偏ったアゴニズムがますます重視されるようになっている。偏った化合物を検出するには、技術的な偏りを避けるために、アッセイの感度と動態に注意しながら、複数の経路(例えば、Gタンパク質の活性化とβ-アレスチンのリクルートメント)を測定する並行アッセイが必要である。

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