Cellules KATO-III
545,10 CAD$*
Les produits sont expédiés congelés, dans de la glace carbonique, à l'intérieur de cryotubes. Chaque cryotube contient généralement 3 × 10⁶ cellules pour les lignées adhérentes ou 5 × 10⁶ cellules pour les lignées en suspension (voir le certificat d'analyse du lot pour plus de détails).
Renseignements généraux
| Description | La lignée cellulaire KATO-III est un modèle de carcinome gastrique humain dérivé du site métastatique d’un adénocarcinome peu différencié. Ces cellules sont largement utilisées dans la recherche sur le cancer de l’estomac, en particulier pour l’étude des mécanismes moléculaires à l’origine de la progression tumorale, de la résistance aux médicaments et des métastases. Les cellules KATO-III présentent un caryotype aneuploïde, caractérisé par de multiples anomalies chromosomiques, ce qui contribue à leur phénotype cancéreux agressif. Elles sont notamment déficientes en p53, une caractéristique souvent associée à une tumorigénicité accrue et à des réponses altérées à la chimiothérapie, ce qui en fait un outil précieux pour étudier le rôle de p53 dans le cancer de l’estomac. Les cellules KATO-III se développent en suspension et présentent une morphologie arrondie. Elles possèdent une forte capacité de prolifération, ce qui les rend adaptées à diverses applications in vitro, notamment le criblage de médicaments et les essais de cytotoxicité. Ces cellules sont également utilisées dans les études sur les voies de signalisation cellulaire, car leur signalisation aberrante est une caractéristique distinctive de la pathogenèse du cancer de l’estomac. Les chercheurs utilisent souvent les cellules KATO-III pour évaluer l’efficacité de nouveaux agents thérapeutiques, en particulier ceux ciblant HER2, l’EGFR et d’autres voies oncogéniques pertinentes. Cette lignée cellulaire est essentielle pour faire progresser notre compréhension de la biologie du cancer de l’estomac et pour développer des thérapies ciblées visant à améliorer les résultats cliniques chez les patients. |
|---|---|
| Organisme | Humain |
| Tissu | Estomac |
| Maladie | Adénocarcinome |
| Site métastatique | Épanchement pleural |
| Synonymes | Kato III, Kato-III, KATO III, KATOIII, KatoIII, KATO 3, JTC-28, Japanese Tissue Culture-28 |
Caractéristiques
| Âge | 57 ans |
|---|---|
| Genre | Homme |
| Origine ethnique | asiatique |
| Morphologie | Sphérique |
| Propriétés de croissance | Adhérent/en suspension |
Données réglementaires
| Référence | KATO-III (numéro de catalogue Cytion 300381) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 9606 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_0371 |
Données biomoléculaires
| Expression des protéines | P53 négatif, CEA positif |
|---|---|
| Expression de l'antigène | Groupe sanguin B, Rh+ |
| Isoenzymes | PGM3, 1, PGM1, 1, ES-D, 1, AK-1, 1, GLO-1, 2, G6PD, B, produit de la fréquence phénotypique : 0,0742 |
| Tumorigène | Oui, dans les poches buccales de hamsters traités au sérum anti-thymocytes, mais non tumorigène chez les souris nues |
| Caryotype | Le nombre de chromosomes de la lignée souche est hypotétraploïde, la composante 2S représentant 6,2 %. Neuf marqueurs étaient communs à la plupart des métaphases S, tandis que quatre marqueurs étaient moins fréquents. Une région de coloration homogène (HSR) (t(11,HSR)), présente en un exemplaire (parfois en deux exemplaires), était observée dans toutes les métaphases examinées, mais aucun double minute (DM) n’a été détecté (Sekiguchi 1978). |
Manipulation
| Milieu de culture | F12 de Ham, contenant : 1,0 mM de glutamine stable, 1,0 mM de pyruvate de sodium, 1,1 g/L de NaHCO₃ (référence Cytion 820600a) |
|---|---|
| Suppléments | Ajouter 10 % de FBS au milieu de culture |
| Réactif de dissociation | Accutase |
| Temps de doublement | 36 heures |
| Repiquage | Récupérez les cellules en suspension dans un tube de 15 ml et lavez délicatement les cellules adhérentes avec du PBS sans calcium ni magnésium (utilisez 3 à 5 ml pour les flacons T25 et 5 à 10 ml pour les flacons T75). Appliquez de l’Accutase (1 à 2 ml pour les flacons T25, 2,5 ml pour les flacons T75) en veillant à bien recouvrir toute la couche cellulaire. Laissez les cellules incuber à 37 °C pendant 10 minutes. Après l’incubation, combinez et centrifugez à la fois la suspension et les cellules adhérentes. Après la centrifugation, remettez soigneusement le culot cellulaire en suspension et transférez la suspension cellulaire dans de nouveaux flacons contenant du milieu frais. |
| Densité de semis | Une concentration de 2 × 10⁴ cellules/cm² permettra d'obtenir une monocouche confluente en 2 à 3 jours. |
| Renouvellement des fluides | Tous les 3 à 5 jours |
| Rétablissement après le dégel | Après décongélation, ensemencer les cellules à une densité de 5 × 10⁴ cellules/cm² et laisser les cellules se remettre du processus de congélation et adhérer pendant au moins 24 heures. |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (contenant du sérum fœtal bovin) + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation, ou du CM-1 (référence Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
|
| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
|---|
Certificat d'analyse (CoA)
| Numéro de lot | Type de certificat | Date | Numéro de catalogue |
|---|---|---|---|
| 300381-610 | Certificat d'analyse | 05. Dec. 2025 | 300381 |
| 300381-021225 | Certificat d'analyse | 05. Jan. 2026 | 300381 |