Cellules HROG06 T0 M2
1 104,00 CAD$*
Les produits sont expédiés congelés, dans de la glace carbonique, à l'intérieur de cryotubes. Chaque cryotube contient généralement 3 × 10⁶ cellules pour les lignées adhérentes ou 5 × 10⁶ cellules pour les lignées en suspension (voir le certificat d'analyse du lot pour plus de détails).
Renseignements généraux
| Description | HROG06 T0 M2 est une lignée cellulaire de glioblastome multiforme (GBM) humain primaire, établie à partir de tissu tumoral fraîchement réséqué chez un patient adulte chez qui un glioblastome de grade IV selon la classification de l’OMS avait été diagnostiqué. La désignation « T0 » indique que l’échantillon tumoral a été prélevé lors de la première intervention chirurgicale, tandis que « M2 » fait référence au deuxième modèle in vitro généré de manière indépendante à partir de la même tumeur primaire. La lignée cellulaire a été développée au sein de la plateforme HROG (Hansestadt Rostock Glioma), qui se consacre à la production de cultures de gliomes à très faible nombre de passages préservant les caractéristiques biologiques et moléculaires de la tumeur d’origine du patient. La lignée HROG06 T0 M2 se développe en adhésion dans des conditions de culture standardisées et présente une morphologie fusiforme de type fibroblastique, typique des cultures primaires de GBM. Les analyses immunophénotypiques menées sur l’ensemble de la série HROG démontrent l’expression de marqueurs des lignées neurales et gliales, tels que la protéine acide fibrillaire gliale (GFAP), la nestine et la vimentine, ce qui corrobore l’origine astrocytaire de la tumeur. La caractérisation moléculaire au sein de la plateforme HROG comprend l’évaluation de biomarqueurs cliniquement pertinents, tels que le statut de méthylation du promoteur MGMT, l’amplification de l’EGFR et le profilage mutationnel de gènes incluant TP53, IDH1/2, KRAS et BRAF, confirmant la préservation des altérations génomiques associées à la tumeur dans les cultures à passages précoces. La lignée HROG06 T0 M2 a été utilisée pour l’évaluation in vitro des réponses thérapeutiques aux traitements de référence du glioblastome, y compris les agents chimiothérapeutiques alkylants ainsi que les inhibiteurs ciblés. Des analyses comparatives au sein de la collection HROG indiquent une morphologie stable, une cinétique de croissance reproductible et des profils de sensibilité aux médicaments cohérents dès les premiers passages, ce qui confirme son adéquation en tant que modèle de recherche translationnelle. En tant que lignée cellulaire de GBM dérivée d’un patient et à faible nombre de passages, HROG06 T0 M2 offre une plateforme cliniquement pertinente pour l’étude de la biologie du glioblastome, de l’hétérogénéité tumorale et des mécanismes de résistance au traitement. |
|---|---|
| Organisme | Humain |
| Tissu | Cerveau |
| Maladie | Glioblastome |
Caractéristiques
| Origine ethnique | caucasien |
|---|---|
| Propriétés de croissance | Adepte |
Données réglementaires
| Référence | HROG06 T0 M2 (numéro de catalogue Cytion 300883) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 9606 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_B7FP |
Données biomoléculaires
Manipulation
| Milieu de culture | DMEM : F12 de Ham (1:1), p/v : 3,1 g/L de glucose, p/v : 2,5 mM de L-glutamine, p/v : 15 mM d’HEPES, 0,5 mM de pyruvate de sodium, 1,2 g/L de NaHCO₃ (référence Cytion 820400a) |
|---|---|
| Suppléments | Ajouter 10 % de FBS au milieu de culture |
| Réactif de dissociation | Accutase |
| Repiquage | Retirez l’ancien milieu des cellules adhérentes et lavez-les avec du PBS sans calcium ni magnésium. Pour les flacons T25, utilisez 3 à 5 ml de PBS, et pour les flacons T75, utilisez 5 à 10 ml. Ensuite, recouvrez complètement les cellules d’Accutase, en utilisant 1 à 2 ml pour les flacons T25 et 2,5 ml pour les flacons T75. Laissez les cellules incuber à température ambiante pendant 8 à 10 minutes afin de les détacher. Après l’incubation, mélangez délicatement les cellules avec 10 ml de milieu pour les remettre en suspension, puis centrifugez à 300 x g pendant 3 minutes. Éliminez le surnageant, remettez les cellules en suspension dans du milieu frais, puis transférez-les dans de nouveaux flacons contenant déjà du milieu frais. |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un mélange composé de 50 % de milieu de base + 40 % de FBS + 10 % de DMSO, ou du CM-1 (numéro de catalogue Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés afin d’améliorer la récupération et de réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
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| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
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