Cellules CMK
Renseignements généraux
| Description | La lignée cellulaire CMK est un modèle de leucémie mégacaryoblastique humaine mis au point à partir d’un patient atteint du syndrome de Down chez qui une leucémie mégacaryoblastique aiguë (LMMA) avait été diagnostiquée. Ces cellules revêtent une importance particulière pour la recherche sur la différenciation mégacaryocytaire et la leucémie associée à la trisomie 21. Les cellules CMK présentent des marqueurs typiques des mégacaryocytes, tels que les glycoprotéines GPIIb/IIIa et GPIb, qui sont des composants clés des membranes plaquettaires. La présence d’une activité de la peroxydase plaquettaire (PPO), localisée dans l’enveloppe nucléaire et le réticulum endoplasmique, mais non dans l’appareil de Golgi, confirme la lignée mégacaryocytaire de ces cellules. L’analyse ultrastructurale révèle l’existence de granules cytoplasmiques ressemblant à des granules α et de membranes de démarcation, ce qui confirme davantage leur nature mégacaryocytaire. Les cellules CMK se caractérisent par un caryotype complexe, comprenant une quasi-tétraploïdie et une translocation spécifique, der(17)t(11;17), également présente dans les cellules leucémiques d’origine du patient. Cette altération génétique relie la lignée cellulaire à l’état pathologique du patient, offrant ainsi un modèle fiable pour l’étude de la pathogenèse de la LMA-CMK. De plus, la lignée cellulaire CMK peut répondre à des facteurs de croissance hématopoïétiques tels que l’interleukine-3 (IL-3) et le facteur de stimulation des colonies de granulocytes et de macrophages (GM-CSF), qui stimulent la prolifération et la différenciation en formes mégacaryocytaires plus matures. Le traitement par des agents tels que l’ester de phorbol (TPA) renforce l’expression des marqueurs mégacaryocytaires et induit des changements morphologiques, notamment une segmentation cytoplasmique ressemblant à la formation des plaquettes. Ces caractéristiques font de la lignée CMK un outil précieux pour étudier le développement de la lignée mégacaryocytaire, les effets de la trisomie 21 sur l’hématopoïèse et les mécanismes de la leucémogenèse dans le syndrome de Down. |
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| Organisme | Humain |
| Tissu | Sang périphérique |
| Maladie | Leucémie myéloïde associée au syndrome de Down |
Caractéristiques
| Âge | 10 mois |
|---|---|
| Genre | Homme |
| Origine ethnique | Japonais |
| Propriétés de croissance | Suspension |
Données réglementaires
| Référence | CMK (numéro de catalogue Cytion 305533) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 9606 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_0216 |
Données biomoléculaires
| Profil mutationnel | Mutation : TP53, p.Asp49His (c.145G>C), hétérozygote; Fusion génique : TP53-FXR2 |
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Manipulation
| Milieu de culture | DMEM, p/v : 4,5 g/L de glucose, p/v : 4 mM de L-glutamine, p/v : 3,7 g/L de NaHCO₃, p/v : 1,0 mM de pyruvate de sodium (référence Cytion 820300a) |
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| Suppléments | Ajouter 20 % de FBS au milieu de culture |
| Repiquage | Recueillez les cellules en suspension dans un tube de 15 ml et lavez délicatement les cellules adhérentes avec du PBS sans calcium ni magnésium (utilisez 3 à 5 ml pour les flacons T25 et 5 à 10 ml pour les flacons T75). Appliquez de l’Accutase (1 à 2 ml pour les flacons T25, 2,5 ml pour les flacons T75) en veillant à bien recouvrir toute la couche cellulaire. Laissez les cellules incuber à température ambiante pendant 10 minutes. Après l’incubation, combinez la suspension et les cellules adhérentes, puis centrifugez le tout. Après la centrifugation, remettez soigneusement le culot cellulaire en suspension et transférez la suspension cellulaire dans de nouveaux flacons contenant du milieu frais. |
| Densité de semis | 3 à 5 × 10⁵/ml |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (contenant du sérum fœtal bovin) + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation, ou du CM-1 (référence Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
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| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
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Certificat d'analyse (CoA)
| Numéro de lot | Type de certificat | Date | Numéro de catalogue |
|---|---|---|---|
| 305533-060726 | Certificat d'analyse | 13. Aug. 2026 | 305533 |