Cellules C6
545,10 CAD$*
Les produits sont expédiés congelés, dans de la glace carbonique, à l'intérieur de cryotubes. Chaque cryotube contient généralement 3 × 10⁶ cellules pour les lignées adhérentes ou 5 × 10⁶ cellules pour les lignées en suspension (voir le certificat d'analyse du lot pour plus de détails).
Renseignements généraux
| Description | La lignée cellulaire C6 conserve le caractère des cellules gliales tout en présentant une morphologie de fibroblastes; elle provient d’un gliome prélevé sur un rat Wisthar-Furth. Ce gliome a été induit par une exposition à la N-nitrosométhylurée, à la suite de nombreux cycles alternant culture in vitro et passages sur des animaux. La lignée cellulaire de gliome C6 est fréquemment utilisée dans la recherche en neuro-oncologie pour créer des modèles animaux qui reproduisent fidèlement les caractéristiques du gliome humain, ce qui facilite le développement de nouveaux agents et stratégies thérapeutiques. Elle est particulièrement efficace dans la culture cellulaire en 3D et le criblage à haut débit. Les cellules C6 présentent une diversité génétique marquée : elles possèdent un gène p53 de type sauvage, une expression accrue du gène Rb et un locus p16/Cdkn2a/Ink4a mutant, mais ne présentent pas d’expression de l’ARNm de p16 et de p19ARF. Elles surexpriment également plusieurs gènes présents dans les gliomes humains, tels que le PDGFβ, l’IGF-1, l’EGFR et les protéines précurseurs Erb3/Her3. Cependant, l’expression de l’IGF-2, du FGF-9 et du FGF-10 est réduite, tandis que l’expression du gène MMP-7 reste inchangée. À l’instar des gliomes humains, les cellules C6 présentent une activité accrue des gènes de la voie Ras, régulée par l’expression élevée de la protéine activatrice de Ras (GTPase). La lignée cellulaire C6 a été utilisée dans diverses études. Par exemple, elle a servi à examiner la capacité de la 2-(2,4-dihydroxyphényl)thiéno-1,3-thiazin-4-one (BChTT) à freiner la prolifération des cellules cancéreuses et à étudier les mécanismes impliqués dans ce processus. Dans une autre étude, les propriétés cytotoxiques et antioxydantes de l’extrait de CO₂ supercritique (SCE) de la barbe de vieillard (Usnea barbata) ont été étudiées à l’aide de cellules C6. Il est intéressant de noter que ces cellules présenteraient, selon certaines études, des niveaux accrus d’activité de la glycérylphosphate déshydrogénase en réponse aux glucocorticoïdes. |
|---|---|
| Organisme | Rat |
| Tissu | Cerveau |
| Maladie | Gliome |
| Synonymes | C-6, C 6, RGC-6, RGC6, RGc6 |
Caractéristiques
| Âge | Non précisé |
|---|---|
| Genre | Homme |
| Morphologie | De type fibroblaste |
| Type de cellule | Cellules gliales |
| Propriétés de croissance | Adepte |
Données réglementaires
| Référence | C6 (numéro de catalogue Cytion 500142) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 10116 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_0194 |
Données biomoléculaires
| Récepteurs exprimés | Glucocorticoïde |
|---|---|
| Virus | Résultat positif pour le LCMV |
| Sensibilité aux virus | Stomatite vésiculeuse (Indiana), vaccine, herpès simplex |
| Résistance aux virus | Poliovirus 3 |
| Transcriptase inverse | Négatif |
| Produits | Protéine S-100, production de glycérylphosphate déshydrogénase en réponse aux glucocorticoïdes, somatotropine. |
Manipulation
| Milieu de culture | RPMI 1640, contenant 2,0 mM de glutamine stable et 2,0 g/L de NaHCO₃ (numéro d'article Cytion 820700a) |
|---|---|
| Suppléments | Ajouter 10 % de FBS au milieu de culture |
| Réactif de dissociation | Accutase |
| Temps de doublement | 24 heures |
| Repiquage | Retirez l’ancien milieu des cellules adhérentes et lavez-les avec du PBS sans calcium ni magnésium. Pour les flacons T25, utilisez 3 à 5 ml de PBS, et pour les flacons T75, utilisez 5 à 10 ml. Ensuite, recouvrez complètement les cellules d’Accutase, en utilisant 1 à 2 ml pour les flacons T25 et 2,5 ml pour les flacons T75. Laissez les cellules incuber à température ambiante pendant 8 à 10 minutes afin de les détacher. Après l’incubation, mélangez délicatement les cellules avec 10 ml de milieu pour les remettre en suspension, puis centrifugez à 300 x g pendant 3 minutes. Éliminez le surnageant, remettez les cellules en suspension dans du milieu frais, puis transférez-les dans de nouveaux flacons contenant déjà du milieu frais. |
| Densité de semis | Une concentration de 1 × 10⁴ cellules/cm² permettra d'obtenir une couche confluente en environ 4 jours |
| Renouvellement des fluides | 2 à 3 fois par semaine |
| Rétablissement après le dégel | Après décongélation, ensemencer les cellules à une densité de 5 × 10⁴ cellules/cm² et laisser les cellules se remettre du processus de congélation et adhérer pendant au moins 24 heures. |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (contenant du sérum fœtal bovin) + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation, ou du CM-1 (référence Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
|
| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
|---|
Certificat d'analyse (CoA)
| Numéro de lot | Type de certificat | Date | Numéro de catalogue |
|---|---|---|---|
| 500142-34-140624 | Certificat d'analyse | 23. May. 2025 | 500142 |
| 500142-615-130624 | Certificat d'analyse | 23. May. 2025 | 500142 |