Cellules AMO-1
Renseignements généraux
| Description | La lignée cellulaire AMO-1 est un modèle de myélome multiple dérivé d’une néoplasie maligne des plasmocytes. Elle est largement utilisée dans la recherche visant à élucider les mécanismes de sensibilité aux médicaments, d’apoptose et de signalisation des cellules tumorales dans le myélome. Les cellules AMO-1 sont sensibles à divers agents chimiothérapeutiques et traitements ciblés, tels que les inhibiteurs du protéasome et les inhibiteurs de la tyrosine kinase, qui sont devenus essentiels dans le traitement du myélome multiple. Des études ont démontré que le traitement par des inhibiteurs de la tyrosine kinase de la rate (Syk) induit des effets antiprolifératifs et pro-apoptotiques significatifs dans les cellules AMO-1. Cette action se produit par l’inhibition de voies de signalisation essentielles, notamment celles de la MAPK et du NF-kappaB, et se caractérise par une libération accrue de cytochrome c et l’activation de marqueurs apoptotiques tels que la caspase-3 et la PARP-1. De plus, l’inhibition de Syk réduit la migration cellulaire et l’interaction avec les composants stromaux de la moelle osseuse, ce qui limite davantage la survie des cellules myélomateuses. Les cellules AMO-1 se sont également révélées sensibles à des composés naturels ciblant l’axe Notch3-p53, tels que les dérivés de la sophocarpine. Ces composés réduisent la viabilité cellulaire en régulant à la baisse les protéines anti-apoptotiques (p. ex., Bcl-2) et en régulant à la hausse les facteurs pro-apoptotiques (p. ex., Bax et la caspase-3 clivée). De plus, le traitement à la sophocarpine diminue l’expression de Notch3, une voie liée à la progression tumorale dans le myélome et d’autres cancers. Cela fait des cellules AMO-1 un modèle efficace pour tester des médicaments visant à modifier la signalisation Notch et les voies apoptotiques médiées par p53. Dans le contexte de l’immunothérapie, les cellules AMO-1 sont reconnues par les cellules T γδ grâce à l’expression de la molécule d’adhésion intercellulaire 1 (ICAM-1), et la transfection visant à augmenter l’expression de l’ICAM-1 renforce leur sensibilité à la lyse médiée par les cellules T. Cette caractéristique favorise les études sur les immunothérapies ciblant le myélome en tant qu’approche alternative pour les cas résistants au traitement. |
|---|---|
| Organisme | Humain |
| Tissu | Ascite |
| Maladie | Myélome multiple |
| Synonymes | AMo1, AMO1 |
Caractéristiques
| Âge | 64 ans |
|---|---|
| Genre | Femme |
| Origine ethnique | Japonais |
| Morphologie | Cellules rondes |
| Propriétés de croissance | Suspension |
Données réglementaires
| Référence | AMO-1 (numéro de catalogue Cytion 305525) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_Numéro d'identification fiscale | 9606 |
| Cellosaurus - Numéro d'enregistrement | CVCL_1806 |
Données biomoléculaires
| Profil mutationnel | Fusion génique : IGKV1-8-IGKJ1; Fusion génique : IGKV3-20-IGKJ2; Mutation : BCOR, p.Gln312del (c.932_934AGC[1]) (c.935_937delAGC), hétérozygote; Mutation : KRAS, p.Ala146Thr (c.436G>A), hétérozygote; Mutation : STAT3, p.Cys712Tyr (c.2135G>A), hétérozygote; Mutation : TET2, p.Gln1699Ter (c.5095C>T), hétérozygote |
|---|
Manipulation
| Milieu de culture | RPMI 1640, contenant 2,0 mM de glutamine stable et 2,0 g/L de NaHCO₃ (numéro d'article Cytion 820700a) |
|---|---|
| Suppléments | Ajouter 20 % de FBS au milieu de culture |
| Repiquage | Recueillez les cellules en suspension dans un tube de 15 ml et lavez délicatement les cellules adhérentes avec du PBS sans calcium ni magnésium (utilisez 3 à 5 ml pour les flacons T25 et 5 à 10 ml pour les flacons T75). Appliquez de l’Accutase (1 à 2 ml pour les flacons T25, 2,5 ml pour les flacons T75) en veillant à bien recouvrir toute la couche cellulaire. Laissez les cellules incuber à température ambiante pendant 10 minutes. Après l’incubation, combinez la suspension et les cellules adhérentes, puis centrifugez le tout. Après la centrifugation, remettez soigneusement le culot cellulaire en suspension et transférez la suspension cellulaire dans de nouveaux flacons contenant du milieu frais. |
| Densité de semis | 3 à 5 × 10⁵/ml |
| Renouvellement des fluides | 2 à 3 fois par semaine |
| Milieu de congélation | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (contenant du sérum fœtal bovin) + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation, ou du CM-1 (référence Cytion 800100), qui contient des osmoprotecteurs et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryoconservation. |
| Décongélation et culture des cellules |
|
| Atmosphère d'incubation | 37 °C, 5 % de CO₂, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions d'entreposage | Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide. |
Contrôle de la qualité et analyse moléculaire
| Stérilité | La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence. Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes. |
|---|