Células CLS-103
USD 650.00*
Los productos se envían congelados en hielo seco dentro de criotubos. Cada criotubo suele contener 3 × 10⁶ células en el caso de las líneas adherentes o 5 × 10⁶ células en el caso de las líneas en suspensión (consulte el certificado de análisis del lote para obtener más detalles).
Información general
| Descripción | La línea celular CLS-103 proviene de tumores primarios de carcinoma de células escamosas en ratones NMRI. Esta línea celular se desarrolló tras la inducción de dichos tumores mediante una única aplicación oral de 7,12-dimetilbenz(a)antraceno (DMBA), un potente carcinógeno que se utiliza habitualmente en la investigación experimental del cáncer. La elección del DMBA para la inducción tumoral refleja su eficacia para imitar las vías del cáncer humano, lo que convierte a la línea celular CLS-103 en un valioso modelo para estudiar los mecanismos moleculares y celulares del carcinoma de células escamosas. |
|---|---|
| Organismo | Ratón |
| Tejido | Estómago |
| Enfermedad | Carcinoma de células escamosas |
| Sinónimos | CLS 103, CLS103 |
Características
| Raza/Subespecie | NMRI |
|---|---|
| Edad | Sin especificar |
| Género | Sin especificar |
| Morfología | De tipo epitelial |
| Propiedades de crecimiento | Adherente |
Datos normativos
| Referencia | CLS-103 (número de catálogo de Cytion 400176) |
|---|---|
| Nivel de bioseguridad | 1 |
| NCBI_TaxID | 10090 |
| N.º de acceso de Cellosaurus | CVCL_5725 |
Datos biomoleculares
| Tumorigénico | Sí, en ratones NMRI |
|---|
Manejo
| Medio de cultivo | RPMI 1640, con 2,0 mM de glutamina estable y 2,0 g/L de NaHCO₃ (número de artículo de Cytion: 820700a) |
|---|---|
| Suplementos | Añade al medio un 10 % de FBS |
| Reactivo de disociación | Accutase |
| Tiempo de duplicación | 36 horas |
| Subcultivo | Retira el medio usado de las células adheridas y lávalas con PBS sin calcio ni magnesio. Para los frascos T25, usa de 3 a 5 ml de PBS, y para los frascos T75, usa de 5 a 10 ml. Luego, cubra las células por completo con Accutase, utilizando de 1 a 2 ml para los frascos T25 y 2,5 ml para los frascos T75. Deje que las células se incuben a temperatura ambiente durante 8 a 10 minutos para desprenderse. Después de la incubación, mezcla suavemente las células con 10 ml de medio para resuspendarlas; luego, centrifuga a 300xg durante 3 minutos. Deseche el sobrenadante, resuspenda las células en medio fresco y transfiéralas a frascos nuevos que ya contengan medio fresco. |
| Densidad de siembra | 1 x 10⁴ células/cm² dará como resultado una capa confluente en un plazo de 4 días. |
| Renovación de fluidos | Cada 3 días |
| Recuperación tras el deshielo | Después de descongelarlas, siembre las células a una densidad de 5 × 10⁴ células/cm² y deje que se recuperen del proceso de congelación y se adhieran durante al menos 24 horas. |
| Medio de congelación | Como medio de criopreservación, utilizamos un medio de crecimiento completo (que incluye FBS) + 10 % de DMSO para garantizar una viabilidad adecuada tras la descongelación, o CM-1 (número de catálogo de Cytion 800100), que incluye osmoprotectores y estabilizadores metabólicos optimizados para mejorar la recuperación y reducir el estrés inducido por la criopreservación. |
| Descongelación y cultivo de células |
|
| Atmósfera de incubación | 37 °C, 5 % de CO₂, atmósfera humidificada. |
| Condiciones de envío | Las líneas celulares criopreservadas se envían en hielo seco, en un embalaje aislante validado que contiene suficiente refrigerante para mantener una temperatura de aproximadamente −78 °C durante todo el transporte. Al recibir el envío, revise el contenedor de inmediato y traslade los viales sin demora al lugar de almacenamiento adecuado. |
| Condiciones de almacenamiento | Para la conservación a largo plazo, coloque los viales en nitrógeno líquido en fase de vapor a una temperatura de entre −150 y −196 °C, aproximadamente. El almacenamiento a −80 °C solo es aceptable como un paso intermedio breve antes de transferirlos al nitrógeno líquido. |
Control de calidad y análisis molecular
| Esterilidad | Se descarta la contaminación por micoplasmas mediante ensayos basados en PCR y métodos de detección de micoplasmas basados en luminiscencia. Para garantizar que no haya contaminación bacteriana, fúngica o por levaduras, los cultivos celulares se someten a inspecciones visuales diarias. |
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