Cellules Neuro2a-Luc
800,00 €*
Les produits sont expédiés congelés dans de la glace carbonique dans des cryotubes. Chaque cryotube contient généralement 3 × 10 6 cellules pour les lignées adhérentes ou 5 × 106 cellules pour les lignées en suspension (voir le certificat d'analyse du lot pour plus de détails).
Informations générales
| Description | Neuro-2a-Luc est un dérivé de la lignée cellulaire de neuroblastome murin Neuro-2a (N2a) exprimant la luciférase. Les cellules Neuro-2a proviennent d’un tissu de neuroblastome dérivé de la crête neurale murine et sont largement utilisées comme modèle in vitro pour la différenciation neuronale, les études de neurotoxicité, la recherche sur la transduction du signal et les investigations en neuro-oncologie. L'expression stable d'un rapporteur luciférase permet une détection bioluminescente sensible et quantitative des cellules viables et de l'activité cellulaire, ce qui rend Neuro-2a-Luc particulièrement utile pour la surveillance longitudinale dans les systèmes expérimentaux in vitro et in vivo. Selon la conception du rapporteur, l'expression de la luciférase peut être constitutive ou liée à l'activité d'un promoteur spécifique à une voie de signalisation. Les cellules Neuro-2a-Luc sont couramment utilisées dans des applications impliquant le suivi de la croissance tumorale, le criblage de médicaments à haut débit, les tests de différenciation neuronale et l'évaluation en temps réel des réponses thérapeutiques. Dans les modèles de xénogreffes et de métastases, l'imagerie par bioluminescence basée sur la luciférase permet un suivi non invasif de la charge tumorale et de la progression de la maladie avec une grande sensibilité. Les systèmes dérivés de Neuro-2a sont également largement utilisés pour étudier la morphologie neuronale, la croissance des neurites, l'apoptose, le stress oxydatif et les mécanismes associés aux maladies neurodégénératives. La modification par la luciférase facilite l'analyse quantitative rapide de la prolifération cellulaire, de la cytotoxicité, de l'activité transcriptionnelle ou de la modulation des voies en réponse à des perturbations pharmacologiques ou génétiques. Comme pour d'autres lignées cellulaires rapporteuses modifiées, les performances expérimentales de Neuro-2a-Luc peuvent dépendre de facteurs tels que le site d'intégration du construct de luciférase, la configuration du promoteur, la compatibilité des substrats et la stabilité de l'expression du rapporteur au cours des passages successifs. Des données de caractérisation supplémentaires, notamment des détails concernant la variante de luciférase, le marqueur de sélection et les tests de validation, peuvent être requises pour des applications expérimentales hautement spécialisées. |
|---|---|
| Organisme | Souris |
| Tissus | Système nerveux périphérique |
| Maladie | Neuroblastome |
| Synonymes | Neuro2A-Luc |
Caractéristiques
| Genre | Homme |
|---|---|
| Type de cellule | Cellules souches neuronales et amiboïdes |
| Propriétés de croissance | Adhérent |
Données réglementaires
| Citation | Neuro-2a-Luc (référence Cytion 305690) |
|---|---|
| Niveau de biosécurité | 1 |
| NCBI_TaxID | 10090 |
| CellosaurusAccession | CVCL_K046 |
Données biomoléculaires
| Expression des protéines | Luc |
|---|---|
| Expression de l'antigène | H-2a |
| Virus | Virus Ectromelia (mousepox) : négatif |
| Résistance aux virus | Poliovirus 1 |
| Transcriptase inverse | Négatif |
| Produits | Tubuline, acétylcholinestérase |
Manipulation
| Milieu de culture | EMEM (MEM Eagle), w : 2 mM L-Glutamine, w : 2.2 g/L NaHCO3, w : EBSS (numéro d'article Cytion 820100a) |
|---|---|
| Suppléments | Compléter le milieu avec 10 % de FBS et 1 % de NEAA |
| Réactif de dissociation | Accutase |
| Sous-culture | Retirer l'ancien milieu des cellules adhérentes et les laver avec du PBS dépourvu de calcium et de magnésium. Pour les flacons T25, utiliser 3-5 ml de PBS, et pour les flacons T75, 5-10 ml. Ensuite, recouvrir complètement les cellules avec Accutase, en utilisant 1 à 2 ml pour les flacons T25 et 2,5 ml pour les flacons T75. Laisser les cellules incuber à température ambiante pendant 8-10 minutes pour les détacher. Après incubation, mélanger délicatement les cellules avec 10 ml de milieu pour les remettre en suspension, puis centrifuger à 300xg pendant 3 minutes. Jeter le surnageant, remettre les cellules en suspension dans du milieu frais et les transférer dans de nouveaux flacons contenant déjà du milieu frais. |
| Densité de semis | 1 à 3 × 10⁴ cellules/cm² |
| Renouvellement des fluides | 2 à 3 fois par semaine |
| Congélation du milieu | Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet + 10 % de DMSO pour assurer une viabilité adéquate après décongélation. |
| Décongélation et culture des cellules |
|
| Atmosphère d'incubation | 37°C, 5%CO2, atmosphère humidifiée. |
| Conditions d'expédition | Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées sur glace sèche dans des emballages isolés et validés, avec suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d'environ -78 °C tout au long du transport. À la réception, inspecter immédiatement le conteneur et transférer sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié. |
| Conditions de stockage | Pour une conservation à long terme, placer les flacons dans de l'azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre -150 et -196 °C environ. Le stockage à -80 °C n'est acceptable qu'en tant qu'étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l'azote liquide. |
Contrôle de qualité / Profil génétique / HLA
Certificat d'analyse (CoA)
| Numéro de lot | Type de certificat | Date | Numéro de catalogue |
|---|---|---|---|
| 305690-100426 | Certificat d'analyse | 15. May. 2026 | 305690 |
Accord de transfert de matériel
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