BSC1-Zellen
Allgemeine Informationen
Beschreibung | Die BSC-1-Zelllinie, auch bekannt als Cercopithecus aethiops-Nierenzellen, stammt aus der Niere des afrikanischen Grünen Affen. Diese in den 1960er Jahren etablierte Zelllinie wird aufgrund ihrer Anfälligkeit für Adenoviren, Affenviren und andere Krankheitserreger in der virologischen Forschung intensiv genutzt. BSC-1-Zellen weisen eine epitheliale Morphologie auf und sind in der Kultur adhärent, so dass sie sich für eine Vielzahl von Versuchsanordnungen eignen, einschließlich Studien zur Virus-Wirt-Interaktion und Zytotoxizitätstests. Eines der besonderen Merkmale von BSC-1-Zellen ist ihre Nützlichkeit bei der Vermehrung und Erhaltung von Polioviren, was die Entwicklung von Impfstoffen und Studien zum Lebenszyklus des Virus erleichtert. Die Zellen sind auch für ihre Rolle bei der Entdeckung und Untersuchung von Adenoviren bekannt und haben wesentlich zu unserem Verständnis der viralen Genetik und Replikationsprozesse beigetragen. Trotz ihres Ursprungs und ihrer primären Verwendung werden BSC-1-Zellen auch in der pharmakologischen Forschung und Toxikologie eingesetzt, um die Auswirkungen verschiedener Substanzen auf zelluläre Prozesse und die Lebensfähigkeit zu testen. Aufgrund ihrer robusten Wachstumseigenschaften und ihrer Fähigkeit, relativ leicht transfiziert zu werden, sind BSC-1-Zellen in der Molekularbiologie für Genexpressionsstudien von großem Wert. Ihre Kompatibilität mit einer breiten Palette von DNA-Transfektionsmethoden unterstützt ihre Verwendung in der Gentherapieforschung und der rekombinanten Proteinproduktion. Insgesamt stellen BSC-1-Zellen weiterhin eine wichtige Ressource in der biomedizinischen Forschung dar, die Einblicke in das Zellverhalten und die molekularen Grundlagen von Krankheiten ermöglicht. |
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Organismus | Chlorocebus pygerythrus (Grüne Meerkatze) |
Gewebe | Niere |
Synonyme | BSC-1, BSC1, GMK, BSC-1, Biologics Standards-Cercopithecus-1 |
Merkmale
Morphologie | Epithelial |
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Wachstumseigenschaften | Adhärent |
Identifikatoren / Biologische Schutzstufe / Zitation
Zitat | BS-C-1 (Cytion Katalognummer 305009) |
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Biosicherheitsstufe | 1 |
Expression / Mutation
Proteinexpression | Keratin |
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Handhabung
Nährboden | EMEM, w: 2 mM L-Glutamin, w: 1,5 g/L NaHCO3, w: EBSS, w: 1 mM Natriumpyruvat, w: NEAA (Cytion-Artikelnummer 820100c) |
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Mittlere Supplemente | Supplemente des Mediums mit 10% FBS |
Passage-Lösung | Accutase |
Verdopplungszeit | 72 Stunden |
Subkultivierung | Entfernen Sie das alte Medium von den adhärenten Zellen und waschen Sie sie mit PBS, das kein Kalzium und Magnesium enthält. Für T25-Kolben 3-5 ml PBS und für T75-Kolben 5-10 ml verwenden. Anschließend werden die Zellen vollständig mit Accutase bedeckt, wobei 1-2 ml für T25-Kolben und 2,5 ml für T75-Kolben verwendet werden. Lassen Sie die Zellen 8-10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren, um sie abzulösen. Nach der Inkubation mischen Sie die Zellen vorsichtig mit 10 ml Medium, um sie zu resuspendieren, und zentrifugieren sie dann 3 Minuten lang bei 300xg. Den Überstand verwerfen, die Zellen in frischem Medium resuspendieren und in neue Kolben überführen, die bereits frisches Medium enthalten. |
Splitverhältnis | 1: 3 bis 1: 4 |
Medienwechsel | 2 bis 3 Mal pro Woche |
Einfriermedium | CM-1 (Cytion Katalognummer 800100) |
Handhabung von kryokonservierten Kulturen |
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Qualitätskontrolle / Genetisches Profil / HLA
Sterilität | Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen. Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft. |
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